Выращивание стерляди: Разведение стерляди » FISH-AGRO | Проектирование и поставка оборудования для рыборазведения в УЗВ — Печати, полиграфия, наружная реклама в Волгограде

Содержание

Разведение стерляди » FISH-AGRO | Проектирование и поставка оборудования для рыборазведения в УЗВ

Изобретение относится к рыбоводству, а именно к выращиванию стерляди в установках с замкнутым циклом водообеспечения, и может быть использовано в условиях круглогодичного выращивания товарной стерляди. Формируют четыре группы выращиваемой стерляди одной возрастной генерации. Осуществляют зарыбление двух групп бассейнов с последующим замещением выращенной рыбы посадочным материалом этой же или последующей генерации с плотностью посадки 200-250 шт./м³. В первой группе бассейнов выращенную товарную стерлядь первой группы замещают третьей группой посадочного материала той же генерации, после выращивания которой бассейны зарыбляют посадочным материалом первой группы следующей генерации, и т.д. Во второй группе бассейнов выращенную товарную стерлядь второй группы замещают посадочным материалом четвертой группы одновозрастной генерации, после выращивания которой зарыбляют бассейны посадочным материалом второй группы следующей генерации, и т.д. Интервал между посадками соседних групп составляет три месяца, а срок выращивания каждой группы в бассейне — шесть месяцев. Поддерживают следующие качественные показатели технологической воды в бассейнах: температура воды 18-25°С, рН 6,5-7,5, насыщение воды кислородом 100-150%, содержание аммония до 0,5 мг/л, нитритов до 0,2 мг/л, нитратов до 100 мг/л. Реализацию товарной стерляди в каждой группе рыб товарной массы около 500 г начинают с начала четвертого месяца выращивания и осуществляют в течение трех месяцев. Обеспечивается снижение сроков выращивания товарной стерляди, а также возможность ежемесячной реализации товарной рыбы.

Наиболее близким по технической сущности — прототипом — является способ цикличного выращивания товарной рыбы в группах бассейнов с регулируемыми условиями обитания при замкнутой системе циркуляции воды, предусматривающий в каждом цикле зарыбление одного из бассейнов группы посадочным материалом, его подращивание, последующую пересадку рыбы по мере роста из бассейна в бассейн и отбор товарной рыбы, при этом выращивание рыбы осуществляют в одинаковых по объему и конструктивному выполнению бассейнах, число которых в группе равно 8, в бассейнах создают одинаковые условия жизнеобеспечения, в первый бассейн каждой группы вносят при зарыблении посадочный материал в количестве, необходимом для зарыбления всех бассейнов данной группы, подращивание ведут до максимально допустимой величины ихтиомассы, а при пересадке рыбы из бассейна в бассейн переводят половину от выращенного количества в следующей последовательности: из первого бассейна во второй, из двух первых — в третий и четвертый, из четырех первых — в оставшиеся четыре, при этом при отборе товарной рыбы из первого бассейна рыбу реализуют полностью, а из остальных семи — половину и во всех последующих циклах выращивания полный отбор товарной рыбы из семи бассейнов производят перед зарыблением их очередной 50%-ной порцией рассаживаемой рыбы (см. RU 2055596 С1, кл. А01К 61/00).

Недостатком известного решения является необходимость реализации разнокачественной по размерному составу товарной рыбы. Процесс выращивания товарной рыбы в бассейнах, в которые переводят рыбу в последнюю очередь, оказывается длительнее процесса выращивания рыбы в первом бассейне и может составлять около года. Временные и материальные затраты на производство разных групп рыбы оказываются существенно различными, при этом для группы с самой короткой реализацией эти затраты не могут быть меньше некоторой объективно обусловленной величины. Указанный недостаток делает процесс выращивания товарной рыбы избыточно затратным и трудоемким, что ограничивает его область применения.

Задачей изобретения и обусловленным ею техническим результатом является расширение области применения за счет выравнивания периодов выращивания стерляди разных групп генерации и, как следствие, снижения сроков выращивания товарной стерляди, а также возможность ежемесячной реализации товарной рыбы.

Для достижения указанного результата в способе выращивания товарной стерляди, заключающемся в зарыблении бассейнов посадочным материалом, выращивании товарной рыбы в группах бассейнов и реализации товарной рыбы, осуществляют ежегодную генерацию посадочного материала стерляди так, что каждая генерация включает четыре группы посадочного материала, выращиваемого в режиме полицикла, осуществляют зарыбление двух групп бассейнов с последующим замещением выращенной рыбы посадочным материалом этой же или последующей генерации в следующем порядке: для одной группы бассейнов выращенную товарную стерлядь первой группы замещают третьей группой посадочного материала той же генерации, после выращивания которой бассейны зарыбляют посадочным материалом первой группы следующей генерации, и т.д., для другой группы бассейнов выращенную товарную стерлядь второй группы замещают посадочным материалом четвертой группы одновозрастной генерации, после выращивания которой зарыбляют бассейны посадочным материалом второй группы следующей генерации, и т.д. так, чтобы период выращивания рыбы каждой группы составлял шесть месяцев, а сроки зарыбления одной группы бассейнов отличались от сроков зарыбления другой группы бассейнов на три месяца, в соответствии со сроками выращивания групп посадочного материала в режиме полицикла, зарыбление бассейнов осуществляют с плотностью посадки 200-250 шт./м

3 и поддерживают следующие качественные показатели технологической воды в бассейнах: температура воды 18-25°С, рН 6,5-7,5, насыщение воды кислородом 100-150%, содержание аммония до 0,5 мг/л, нитритов до 0,2 мг/л, нитратов до 100 мг/л, реализацию товарной стерляди в каждой группе рыб товарной массы около 500 г начинают с начала четвертого месяца выращивания и осуществляют в течение трех месяцев.

Кроме того: — четыре группы посадочного материала, выращиваемого в режиме полицикла, получают в результате ежегодного «нереста» четырех групп одновозрастных производителей, нерестовый период каждой группы которых устанавливают через три месяца после начала наступления нерестового периода предшествующей группы,

— ежегодную генерацию посадочного материала стерляди, выращиваемой в режиме полицикла, осуществляют с использованием двух групп бассейнов, в которых выращивают отстоящие на три месяца друг от друга и последовательно вовлекаемые в технологический процесс четыре группы мальков стерляди,

— в двух группах бассейнов используют бассейны одинаковой емкости глубиной 1 м,

— реализацию товарной стерляди осуществляют так, что к окончанию четвертого месяца выращивания плотность выращиваемой рыбы в бассейне составляет 160-200 шт./м³, к окончанию пятого месяца — 100-125 шт./м³, к окончанию шестого месяца — 60-75 шт./м

— в процессе выращивания поддерживают биомассу в бассейнах так, чтобы потребление кислорода и выделение экзометаболитов оставались относительно постоянными,

— реализацию товарной стерляди каждой группы выращиваемой рыбы, осуществляют в течение трех месяцев: в первый месяц реализуют рыбу с опережающим ростом, во второй месяц — рыб со средней степенью раскрытия ростовой потенции, в третий месяц — рыб, отстающих в росте.

Способ выращивания товарной стерляди заключается в зарыблении бассейнов посадочным материалом, выращивании товарной рыбы в группах бассейнов и отборе (реализации) товарной рыбы, при этом предварительно перед зарыблением бассейнов осуществляют последовательную генерацию посадочного материала стерляди, выращиваемой в режиме полицикла, состоящего из четырех групп одной возрастной генерации. Четыре группы посадочного материала, выращиваемого в режиме полицикла, получают в результате ежегодного нереста четырех групп одновозрастных производителей, нерестовый период каждой группы которых наступает через три месяца после начала наступления нерестового периода предшествующей группы. Зарыбление бассейнов осуществляют с плотностью посадки 200-250 шт./м

3, при этом используют две группы бассейнов, включающих, по меньшей мере, четыре одноразмерных бассейна глубиной 1 м. Сроки зарыбления в двух группах бассейнов наступают в соответствии со сроками выращивания в режиме полицикла групп посадочного материала, то есть каждые три месяца. В первой группе бассейнов выращивание товарной стерляди и последующее ее замещение осуществляют в следующем порядке: первая группа генерации, затем третья группа той же (одновозрастной) генерации, затем первая группа следующей генерации и т.д., во второй группе бассейнов — вторая группа текущей генерации, затем четвертая группа одновозрастной генерации, затем вторая группа следующей генерации и т.д. так, чтобы срок выращивания каждой группы в бассейне составлял не менее шести месяцев. Реализацию товарной стерляди в каждой группе рыб товарной массы около 500 г начинают с четвертого месяца выращивания и осуществляют в течение трех месяцев, так что в первый месяц реализуют рыбу с опережающим ростом, во второй месяц — рыб со средней степенью раскрытия ростовой потенции, в третий месяц — рыб, отстающих в росте. Поддерживают следующие качественные показатели технологической воды в бассейнах: температура воды 18-25°С, рН 6,5-7,5, насыщение воды кислородом 100-150%, содержание аммония до 0,5 мг/л, нитритов до 0,2 мг/л, нитратов до 100 мг/л.

Реализацию товарной стерляди осуществляют так, что к окончанию четвертого месяца выращивания плотность выращиваемой рыбы в бассейне составляет 160-200 шт./м³, к окончанию пятого месяца — 100-125 шт./м³, к окончанию шестого месяца — 60-75 шт./м³.

В процессе выращивания поддерживают биомассу в бассейнах так, чтобы потребление кислорода и выделения экзометаболитов оставались относительно постоянными.

Последовательную ежегодную генерацию посадочного материала стерляди, выращиваемой в режиме полицикла, осуществляют с использованием двух групп бассейнов, в которых выращивают отстоящие на три месяца друг от друга и последовательно вовлекаемые в технологический процесс четыре группы посадочного материала стерляди.

Способ выращивания товарной стерляди реализуется следующим образом.

Основой для реализации заявленного способа является использование структуры последовательных генераций посадочного материала стерляди, выращиваемых в режиме полицикла, и формирование в пределах одной генерации четырех групп выращиваемой товарной стерляди одной возрастной генерации. Период выращивания до товарной массы, составляющей около 500 г, стерляди, выращиваемой от 100 г посадочного материала, составляет шесть месяцев. Реализация способа учитывает наличие в выращиваемых группах стерляди трех размерных групп реализации, включающих группу реализации отстающих в росте, группу реализации со средней степенью раскрытия ростовой потенции, а также группу реализации с опережающим ростом, что позволяет начать реализацию товарной рыбы с четвертого месяца выращивания, продолжать на пятом и заканчивать на шестом. При этом в размерном составе доля первых составляет около 30%, вторых 50%, третьих 20%.

Такая последовательная в течение трех месяцев реализация товарной стерляди в каждой группе обеспечивает возможность круглогодичной, ежемесячной реализации товарной рыбы.

В начале выращивания рыбу высаживают с плотностью посадки 200-250 шт./м³. К окончанию четвертого месяца снижают плотность до 160-200 шт./м³, к концу пятого года — 100-125 шт./м³, к концу шестого года — 60-75 шт./м³. Снижение плотности посадки в ходе реализации части рыбы, достигшей товарной массы, способствует лучшему раскрытию ростовой потенции у остающихся на выращивании, что в свою очередь при глубине бассейнов 1,0 м обеспечивает рыбопродуктивность до 100-120 кг/м³.

Общая величина ихтиомассы в бассейнах остается относительно постоянной величиной, что обеспечивает относительно стабильную нагрузку на систему водоочистки, а объемы рыбоводных бассейнов используются равномерно в течение года.

Неодинаковая размерность бассейнов может приводить либо к недогруженности рыбоводных бассейнов, либо к их перегрузке и как следствие к нарушению относительной синхронности роста рыбы в бассейнах, вследствие чего осуществление способа станет невозможным. Условия содержания рыбы в бассейнах также должны быть одинаковыми, в противном случае, если в бассейнах окажутся разные условия содержания рыбы или они будут не стабильные, относительная синхронность роста рыбы также будет нарушена и осуществление способа станет также невозможным.

Таким образом, зарыбление осуществляется ритмично четыре раза в год, что упрощает транспортное обслуживание, снижает трудоемкость обслуживания, связанную с заготовкой гипофизов, организацией племенного стада производителей и ремонта, процессом подготовки производителей к нересту, инъецированием, инкубацией икры, выдерживанием, подращиванием и выращиванием личинок, мальков, работой с живыми кормами.

Поддержание относительно постоянной биомассы в бассейнах осуществляют из условия, что биомасса, реализуемая на 6-м месяце товарной рыбы по уровню потребления кислорода и выделения экзометаболитов, сопоставима с зарыбляемым в освобождающиеся бассейны посадочным материалом, что обеспечивает стабильный режим работы биофильтров.

В бассейнах поддерживают качественные показатели технологической воды: температура воды 18-25°С, рН 6,5-7,5, насыщение воды кислородом 100-150%, содержание аммония до 0,5 мг/л, нитритов до 0,2 мг/л, нитратов до 100 мг/л, что также способствует планомерности процесса выращивания рыбы.

Способ выращивания товарной стерляди отличается от способов выращивания товарной стерляди в прудах и проточных бассейнах отсутствием фактора сезонности в выращивании и реализации товарной рыбы, влияния климатического фактора, возможности двукратного использования в течение года нагульных бассейнов, круглогодичным, ежемесячным режимом реализации товарной рыбы.

Пример.

Заявленный способ представляет собой способ выращивания товарной стерляди в режиме полицикла.

Выращивание посадочного материала стерляди в режиме полицикла позволяет формировать в пределах каждой генерации посадочного материала четыре группы, которые высаживают в бассейны двух групп бассейнов так, чтобы интервал между посадками соседних групп составлял три месяца.

Сроки получения разных групп посадочного материала, а также длительность выращивания обеспечивают возможность использования одного бассейна для последовательного выращивания двух групп каждой генерации так, что в одной группе бассейнов последовательно содержат 1-ю и 3-ю группы посадочного материала, а в другой группе бассейнов соответственно 2-ю и 4-ю группы.

Для зарыбления используют две группы бассейнов. Если порядковый номер группы генерации соответствует порядку, в котором высаживают рыбу в бассейны, то в одну группу бассейнов высаживают последовательно первую и третью группы посадочного материала, в другую группу бассейнов — вторую и четвертую группы посадочного материала.

Сроки выращивания стерляди разных групп приведены в таблице.

Месяцы	Первая группа посадочного материала	Вторая группа посадочного материала	Третья группа посадочного материала	Четвертая группа посадочного материала
октябрь	Выращивание	Выращивание
ноябрь	Выращивание	Выращивание
декабрь		Выращивание	Выращивание
январь		Выращивание	Выращивание
февраль		Выращивание	Выращивание
март			Выращивание	Выращивание
апрель			Выращивание	Выращивание
май			Выращивание	Выращивание
июнь	Выращивание			Выращивание
июль	Выращивание			Выращивание
август	Выращивание			Выращивание
сентябрь	Выращивание	Выращивание
октябрь	Выращивание	Выращивание

Согласно данным, приведенным в таблице, первая и третья группы генерации реализуют ростовую потенцию в первой группе бассейнов, а вторая и четвертая группы генерации — во второй группе бассейнов.

Конкретные сроки выращивания товарной стерляди в двух группах бассейнов увязаны с конкретными сроками выращивания посадочного материала, но могут быть изменены при условии сохранения структуры маточного стада и выращиваемого посадочного материала, если в процессе освоения на всех указанных этапах содержания стерляди в установке с замкнутым циклом водообеспечения будет применен иной временной алгоритм работы с производителями, потомством, а следовательно, и товарной рыбой.

При условии начала выращивания товарной стерляди в установке с замкнутым циклом водообеспечения в первой группе генерации в июне, реализация товарной рыбы закончится в ноябре. Во второй группе генерации в этом случае начало выращивания придется на сентябрь, завершение на февраль следующего года. В третьей, соответственно, на декабрь и май следующего года. В четвертой — март и август следующего года.

Если данную структуру рассматривать в многолетнем плане, то очевидно, что полицикличный характер, с одной стороны, позволяет двукратно использовать две группы бассейнов для выращивания четырех групп товарной рыбы. С другой, при постоянном задействовании бассейнов в процессе выращивания товарной рыбы ежемесячно реализовывать товарную продукцию. Для приведенного в таблице графика реализация товарной рыбы по месяцам в последовательных группах реализации будет выглядеть следующим образом:

первая группа реализации — сентябрь, октябрь, ноябрь,

вторая группа реализации — декабрь, январь, февраль,

третья группа реализации — март, апрель, май,

четвертая группа реализации — июнь, июль, август.

Товарная стерлядь реализуется фактически по достижении товарной массы, при этом период выращивания стерляди разных групп не выходит за рамки шести месяцев, то есть времени, необходимого для набора требуемой товарной массы, а часть выращиваемой стерляди, набравшей товарную массу, реализуется даже ранее окончания этого периода, что позволяет снизить трудозатраты, а также обеспечивает снижение потребляемых корма, электроэнергии и пр. затрат. При этом обеспечивается двукратное в течение года использование нагульных бассейнов.

Таким образом, способ выращивания товарной стерляди обеспечивает более широкую область применения по сравнению с прототипом за счет выравнивания периодов выращивания стерляди разных групп генерации и, как следствие, снижение сроков выращивания товарной стерляди, а также возможность ежемесячной реализации товарной рыбы.

Заявленный способ обеспечивает также равномерную в течение года нагрузку экзометаболитов рыб на биофильтры, что поддерживает стабильность их «работы».

1. Способ выращивания товарной стерляди, заключающийся в зарыблении бассейнов посадочным материалом, выращивании товарной рыбы в группах бассейнов и реализации товарной рыбы, отличающийся тем, что осуществляют ежегодную генерацию посадочного материала стерляди так, что каждая генерация включает четыре группы посадочного материала, выращиваемого в режиме полицикла, осуществляют зарыбление двух групп бассейнов с последующим замещением выращенной рыбы посадочным материалом этой же или последующей генерации в следующем порядке: для одной группы бассейнов выращенную товарную стерлядь первой группы замещают третьей группой посадочного материала той же генерации, после выращивания которой бассейны зарыбляют посадочным материалом первой группы следующей генерации, и т.д., для другой группы бассейнов выращенную товарную стерлядь второй группы замещают посадочным материалом четвертой группы одновозрастной генерации, после выращивания которой зарыбляют бассейны посадочным материалом второй группы следующей генерации, и т.д. так, чтобы период выращивания рыбы каждой группы составлял шесть месяцев, а сроки зарыбления одной группы бассейнов отличались от сроков зарыбления другой группы бассейнов на три месяца, в соответствии со сроками выращивания групп посадочного материала в режиме полицикла, зарыбление бассейнов осуществляют с плотностью посадки 200-250 шт./м³ и поддерживают следующие качественные показатели технологической воды в бассейнах: температура воды 18-25°С, рН 6,5-7,5, насыщение воды кислородом 100-150%, содержание аммония до 0,5 мг/л, нитритов до 0,2 мг/л, нитратов до 100 мг/л, реализацию товарной стерляди в каждой группе рыб товарной массы около 500 г начинают с начала четвертого месяца выращивания и осуществляют в течение трех месяцев.

2. Способ по п.1, отличающийся тем, что четыре группы посадочного материала, выращиваемого в режиме полицикла, получают в результате ежегодного «нереста» четырех групп одновозрастных производителей, нерестовый период каждой группы которых устанавливают через три месяца после начала наступления нерестового периода предшествующей группы.

3. Способ по п.1, отличающийся тем, что ежегодную генерацию посадочного материала стерляди, выращиваемой в режиме полицикла, осуществляют с использованием двух групп бассейнов, в которых выращивают отстоящие на три месяца друг от друга и последовательно вовлекаемые в технологический процесс четыре группы мальков стерляди.

4. Способ по п.1, отличающийся тем, что в двух группах бассейнов используют бассейны одинаковой емкости глубиной 1 м.

5. Способ по п.1, отличающийся тем, что реализацию товарной стерляди осуществляют так, что к окончанию четвертого месяца выращивания плотность выращиваемой рыбы в бассейне составляет 160-200 шт./м³, к окончанию пятого месяца — 100-125 шт./м³, к окончанию шестого месяца — 60-75 шт./м³.

6. Способ по п.1, отличающийся тем, что в процессе выращивания поддерживают биомассу в бассейнах так, чтобы потребление кислорода и выделения экзометаболитов оставались относительно постоянными.

7. Способ по п.1, отличающийся тем, что реализацию товарной стерляди каждой группы выращиваемой рыбы осуществляют в течение трех месяцев: в первый месяц реализуют рыбу с опережающим ростом, во второй месяц — рыбу со средней степенью раскрытия ростовой потенции, в третий месяц — рыбу, отстающую в росте.

Разведение стерляди в домашних условиях: в пруду, в бассейнах

С давних времен стерлядь, один из представителей осетровых рыб, считалась дорогим и желанным для всех продуктом. С развитием различных технологий по производству рыбы в искусственных водоемах получение такого деликатеса стало возможным практически для каждого, было бы желание. В домашних условиях выращивание стерляди вполне возможно. Для этого не так уж и много надо. В принципе, несколько рыб можно вырастить даже в обычном аквариуме.

Рыба: Стерлядь

Выбор подходящего помещения

При разведении стерляди в домашних условиях для начала нужно определиться с территориальными возможностями, а затем подбирать все необходимое, для успешного выращивания этой рыбы. Во многом вопрос, где и как, зависит от планируемого объема получения этого ценного продукта.

Стерлядь в контейнерах

Минимальным по площади является пространство в 30 квадратных метров. Некоторые энтузиасты доказали собственным примером, что осетровых можно выращивать даже в обычной городской квартире. Но далеко не все готовы выделить такую площадь в собственном доме, поэтому для небольших объемов производства, подходят загородный дом или дача с приусадебными участками.

Одним из основных условий, является размещение бассейна с рыбой в закрытом отапливаемом помещении, с возможностью поддержания постоянной температуры в пределах 20 градусов на протяжении всего года.

Видео: разведение осетровых.

Необходимое оборудование

Наиболее подходящими емкостями для выращивания стерляди в домашних условиях являются круглые бассейны с размерами от 1,5 до 2,5 метров в диаметре и глубиной от 1 метра. Построить их можно как самостоятельно, так и купить в специализированном магазине.

При постройке бассейнов используют такие материалы, как металл, дерево, пластик, но самой простой и распространенной является емкость, сделанная из бетона.

Оборудование для стерляди

Для фильтрования и очищения воды в бассейне понадобятся фильтр, насос и компрессор. Это оборудование следует выбирать, учитывая общий объем перерабатываемой воды, с расчетом на продолжительную работу. Поэтому следует делать некоторый запас по мощности устройств.

При достаточно большом количестве бассейнов, а их понадобится минимум три, есть смысл в оборудовании их автокормушками. Несмотря на то, что это приведет к дополнительным материальным затратам, компенсацией будет сэкономленное время, затрачиваемое на ручное кормление рыбы.

Технология разведения рыбы в установках замкнутого водоснабжения.

Приобретение мальков

С этого все начинается. Даже те специалисты, которые вполне успешно занимаются разведением стерляди в домашних условиях и даже в крупных хозяйствах, предпочитают покупать малька у тех, кто специализируется именно на молодняке. Самостоятельно получать икру, а затем и мальков не является экономически оправданным направлением, если в основе лежит разведение самой рыбы.

Малек стерляди в руке

Для дальнейшего разведения в домашних условиях стерляди, рекомендуется покупать мальков, вес которых не менее 5 грамм. Количество зависит от объема бассейна, в который они будут помещены для роста. И, исходя из того, что товарный вес стерляди начинается от 500 грамм, можно рассчитать, какое количество мальков потребуется для того, чтобы получать за год около одной тонны рыбы для реализации.

Кормление стерляди

Стерлядь

При разведении стерляди в домашних условиях особое значение имеет качество корма для рыбы. Стерлядь кормят двумя видами корма – живым и искусственным, в процентном соотношении это 20% к 80% соответственно. В соответствии с изменениями подрастающего молодняка, размеры кормов должны изменять. А из-за того, что одно и то же поколение набирает вес и подрастает с разными темпами необходимо производить сортировку каждые десять дней, разделяя молодых рыб на три категории – мелкую, среднюю и крупную.

Для этого необходимо разделять бассейн (если он один) на соответствующие секции, а при наличии рекомендованных трех бассейнов – производить регулярную пересадку так, чтобы в одной емкости находились особи с одинаковыми параметрами.

В поиске корма, осетровые рыбы активно используют свое обоняние, поэтому тот корм, который попадает к ним в бассейн, должен иметь привлекательный для них запах и быть тяжелее воды, чтобы опускаться на дно. Очень важно вовремя проводить очистку бассейнов от несвежего корма, который может скопиться в виде излишков при кормлении.

Кормление стерляди и осетра.

Простая технология

Все работы по уходу за подрастающей стерлядью сводится к регулярному кормлению рыбы и поддержанию воды в бассейнах в приемлемом состоянии (своевременная очистка и насыщение кислородом).

В чистой профильтрованной воде стерлядь растет быстро и когда вес одной рыбы достигает более 500 грамм – ее уже можно продавать. Заведения общественного питания (рестораны, кафе) предпочитают приобретать для своей кухни рыбу именно с таким весом.

Стерлядь в аквариуме

При разведении стерляди для получения такого деликатеса, как черная икра, технологический процесс намного увеличивается, и все вложения окупятся не так быстро. Но можно выделить одну группу осетровых рыб для этого производства, и параллельно с выращиванием для продажи самих рыб, можно постепенно освоить и производство икры. Для этого придется значительно расширить объемы содержания стерляди. Увеличить количество бассейнов или же перейти на аренду прудов, условия в которых будут подходить для выращивания стерляди. Кроме того, придется заняться учебой, чтобы полностью представлять и уметь использовать биотехнику инкубации икры и получения мальков.

Икру от стерляди можно получать 17-18 лет, это средний период продолжительности жизни осетровых. Но в достаточных объемах и хорошего качества икру, осетровые дают один раз в 2-3 года, поэтому поставить процесс на поток не получится.

Экономические расчеты

Рыбка Стерлядь

Прежде чем вплотную заняться разведением стерляди в домашних условиях следует все тщательно просчитать. Иначе может получиться так, что вкусная рыба будет частенько на вашем столе, но стоимость ее намного превысит цену купленной в супермаркете.

В расчеты следует включить абсолютно все параметры затрат, начиная от оборудования, которое может прослужить много лет, и заканчивая расходами на электроэнергию и кормов, их запас должен быть постоянно в наличии.

При полностью соблюденной технологии, уже через полгода можно получить первые экземпляры для продажи, после того как в бассейн были запущены мальки. В течение последующих трех месяцев из той же партии молодняка будут подрастать запоздавшие в своем развитии особи. Таким образом, на протяжении всей осени, можно будет получать свежую стерлядь отличного товарного качества.

Разведение в прудах

Стерлядь в пруду

Главным отличием от разведения стерляди в бассейнах является сезонность. Но из-за того, что даже небольшой пруд, однозначно намного больше по размерам любого бассейна, количество выращенной рыбы в нем будет значительно больше.

Стерлядь любит чистую воду, поэтому далеко не каждый пруд подойдет для ее разведения. Прежде чем запустить мальков, следует убедиться в том, что условия в пруду для них подходят.

Речь идет о небольших прудах, поддерживать которые в надлежащем состоянии будет под силу нескольким работникам. Как правило, такие пруды имеют чашеобразную форму с небольшим количеством растительности по берегам и достаточным наличием водных растений в воде. Сама вода не должна застаиваться, поэтому очень важен фактор доступа к свежему ее пополнению. Это может быть родник или отвод от недалеко расположенной реки.

Видео: Разведение стерляди

Стерлядь

Стерлядь по латыни — Acipenser ruthenus Стерлядь относится к семейству осетровых. В длину достигает 125 см и веса около 16 кг. От других осетровых стерлядь отличается самым ранним половым созреванием. Самцы в природных условиях достигают половозрелости в 4 – 5 лет, а самки в 7 – 8 лет. Продолжительность жизни стерляди достигает 30 – 35 лет, У стерляди икра считается самой вкусной среди осетровых. Стерлядь считается ценной промысловой рыбой. Она обитает в реках, впадающих в Чёрное, Азовское и Каспийское моря, а так же в реках Сибири Енисее, Оби, Лене, в Онежском и Ладожском озёрах. Среди стерляди существуют разновидности длиннорылой и короткорылой, в зависимости от места и условий обитания. По внешнему виду стерлядь похожа на остальных осетровых, но имеет некоторые различия. Основным отличием можно считать большое количество боковых жучек, которое варьирует от 56 до 71 шт. Спинные жучки в количестве 11 — 18 шт, брюшные 10 – 20 шт. Спинной плавник имеет 32 – 49 лучей, а анальный 16 – 34 лучей. Усики у стерляди имеют бахрому, а нижняя губа прервана. Спина имеет окраску от серовато – коричневой до тёмно – серой, брюхо имеет белый цвет. Стерлядь обитающая в бассейнах рек Енисея и Оби представлена подвидом сибирской стерляди. Стерлядь в наше время считается речной рыбой, но когда то имела полупроходную форму в бассейне Каспия. Обычно стерлядь предпочитает держаться у дна и как правило очень осторожна. Предпочитает самые глубокие места реки и на кормление обычно всплывает ночью, иногда переворачиваясь пузом вверх, и плавая в таком положении, собирает упавших в воду насекомых. В качестве пищи стерляди служат водные личинки насекомых, мелкие моллюски, икра другой рыбы. Сроки размножения стерляди зависят от географической широты и варьируются от апреля по июнь. При размножении предпочитает песчано – галечниковые грунты и хорошее течение. Нерестилища предпочитает на глубинах от 6 до 16 м. Температура воды при нересте стерляди обычно колеблется в пределах 10 – 15 0С. Крупные самки могут вымётывать больше 100 000 икринок В среднем это от 4 до 140 тыс. икринок. Диаметр икры у стерляди 2 – 3 мм, а масса 8 -9 миллиграмм. Икра развивается в диапазоне 4 – 9–ти дней. В бассейне реки Волги стерлядь наиболее многочисленна и в 30-е годы 20-го века её уловы в этих местах доходили до 800 тонн. В настоящее время многие популяции стерляди в реках Днепр, Кубань, Дон, Урал, Кама, Сура занесены в красную книгу из за угрозы исчезновения. В связи с сокращением популяции стерляди возникла необходимость в её искусственном воспроизведении и выращивании. Выращивание можно производить как в открытых так и закрытых водоёмах. Особенно в последнее время набирает популярность выращивание стерляди в УЗВ – установках замкнутого водоснабжения. В отличии от открытых водоёмов в УЗВ стерлядь растёт непрерывно а независимости от погодных условий и времён года. В то время, как в открытых водоёмах стерлядь вынуждена проходить вынужденную зимовку в зимний период, в УЗВ создаются круглогодичные и круглосуточные условия для оптимального роста рыбы и нет необходимости прерывать процесс роста. В связи с этим резко сокращается половое созревание стерляди и период роста. В искусственных условиях стерлядь достигает половозрелости в 2 – 3 года и набирает вес от икринки до 1 кг за 1 год. Подробнее о выращивании стерляди в УЗВ можно прочитать на странице: Выращивание стерляди в УЗВ

Биотехника выращивания бестера

Осетровые рыбы — наиболее ценный вид, которые обитают во внутренних водоемах России. В основном осетровые обитают в морях. Вылов данного вида рыб возможно увеличить, если разводить их в рыбоводных прудах. Для прудового разведения наиболее подходит рыба бестер.

Совместное разведение бестера и растительноядных рыб

Осетровые — наиболее ценный вид рыб, обитающих в наших внутренних водоемах. За малым исключением, они являются обитателями морей (Каспийского, Азовского, Черного), однако уловы их можно увеличить, выращивая некоторые виды в прудах рыбоводных хозяйств.

Наиболее подходящим для этих целей является гибрид белуги со стерлядью — рыба бестер, удачно сочетающий крупную массу и высокий темп роста морского обитателя — белуги — с пресноводным образом жизни речной стерляди.

Фото инкубация икры для получения личинок бестера

Технология выращивания бестера

Выращивание бестера требует усиленного его кормления. Оптимальной температурой выращивания бестера считается 20-25°С, поэтому прудовое осетроводство рекомендуется прежде всего для южных районов страны. Соленость воды при товарном выращивании может быть до 10-12%о, причем солоноватая вода может быть даже более благоприятной, чем пресная. При инкубации икры бестера и подращивании личинок соленость воды должна быть не более 2-3%.

Фото бестер

Прудовое разведение бестера совместно с растительноядными рыбами

Бестера в прудах следует выращивать в поликультуре с растительноядными рыбами — белым амуром и толстолобиком, которые не являются его конкурентами в питании. Не допускается совместное выращивание бестера с карпом, который является серьезным его конкурентом в питании.

Размножение осетровых в прудах возможно только искусственным путем. Биотехника получения и выращивания осетровой молоди достаточно хорошо разработана.

Производственные процессы

В полносистемном товарном осетровом хозяйстве технологическая схема выращивания рыбы бестера состоит из следующих производственных процессов: заготовка производителей белуги и стерляди или отбор гибридных производителей, выращиваемых в хозяйстве; получение зрелых половых продуктов и оплодотворение икры; инкубация икры; выдерживание и подращивание личинок; подготовка, залитие и зарыбление выростных прудов, выращивание молоди бестера до навески 3 грамма; первый облов выростных прудов, учет и транспортировка молоди бестера; выращивание сеголетков бестера; зимовка; выращивание товарных двухлетков бестера; реализация товарной рыбы; заготовка кормов, их хранение и приготовление; выращивание ремонтного и маточного стад бестера.

На фото сеголетки бестера

В отдельных хозяйствах вместо того, чтобы выращивать молодь и содержать производителей, завозят трехграммовую молодь бестера из специальных рыбопитомников.

Нормы и рекомендации для выращивания бестера в рыбоводных хозяйствах

Показатели	Единицаизмерения	Для специализированных хозяйств	Для приспособленных карповых прудов
Показатели	Единицаизмерения	белуга (самка) X стерлядь (самец) и возвратный на белугу
Процент оплодотворения икры	%	80	80
Выход личинок от оплодотворенной икры	%	70	60
Выход личинок переведенных на активное питание	%	60	60
Выход трехграммовой молоди бестера из выростных прудов	%	60	50
Выход сеголетков бестера от трехграммовой молоди из выростных прудов	%	70	60
Средняя масса сеголетков бестера	г	80	50
Плотность посадки сеголетков в зимовалы	тыс. шт./га	150	150
Выход годовиков бестера после зимовки	%	80	80
Выход товарных двухлетков	%	80	80

При выращивании товарного бестера для расчетов следует принимать следующие рыбопродуктивность и навеску:

Рыбопродуктивность выростных прудов, кг/га

по трехграммовой молоди 1200

по сеголеткам 800

естественная 200

Рыбопродуктивность нагульных прудов, кг/га

общая с растительноядными рыбами 1750

по гибридам 1250

естественная 200

Временные рыбоводные нормы при выращивании бестера в садковых хозяйствах (выращивание на завозном посадочном материале)

Ориентировочные весовые стандарты, г

средняя навеска посадочного материала бестера 40

средняя масса двухлетков бестера 400

средняя масса трехлетков бестера 1000

Плотность посадки гибридов в сетчатые садки и бетонные бассейны, шт./м²

на первом году выращивания бестера 200-300

на втором году выращивания 100

в последующие годы до 50

Выход двухлетков бестера за период выращивания, % 70

Выход трехлетков бестера за период выращивания, % 80

Состав кормового рациона для гибридов осетровых — бестера (рыбный фарш), %

Кормовая смесь, близкая к КРТ, %

рыбная мука 10

альбумин 10

крилевая мука 10

куколка тутового шелкопряда 5

гидролизные дрожжи 5

фосфатиды 10

Кормовой коэффициент 6-7

Фото молодь бестера

На фото рыба бестер в аквариуме

Стерлядь

Стерлядь — Acipenser ruthenus Семейство Осетровые — Acipenseridae
Пресноводная донная стайная рыба, постоянно живущая в русле рек. Обитает на участках с быстрым течением. Встречается в озерах. В приустьевых участках крупных рек имеется полупроходная форма.
Населяет реки бассейнов Черного, Азовского, Каспийского и Балтийского морей. В 30-х голах прошлого столетия из Камы проникала в Вычегду. Через систему каналов проникала в Северную Двину, бассейны Ладожского и Онежского озер. В Сибири распространена в Оби, Иртыше и Енисее. Ниже Дудинки в Енисее наблюдается редко, но иногда встречается даже в Енисейском заливе. В Лене и Амуре стерляди нет. В 1928–1933 гг. была акклиматизирована в Печоре. В Каспийское море выходит редко. Чаще, чем в других районах, ее можно встретить у Кавказского побережья.
Жаберные перепонки приращены к межжаберному промежутку, не образуя под ним складки. Тело между рядами жучек покрыто очень мелкими гребенчатыми зернышками. Нижняя губа посредине прервана. Усики бахромчатые. Форма головы и рыла изменчива: рыло либо вытянутое, заостренное, либо укороченное, иногда притуплённое. Спина обычно серая или коричневая, брюхо желтоватое. Самый мелкий представитель рода. Максимальные размеры составляют 125 см и масса 16 кг, однако, обычно не более 1 м и масса до 6–6,5 кг. Предельная продолжительность жизни – 26–27 лет.
Питается водными личинками насекомых, мелкими моллюсками, икрой других рыб. Основой пищи мальков являются мелкие олигохеты. По мере роста спектр питания молоди становится более разнообразным, и к середине лета ее пища мало отличается от пищи крупных особей.
Совершает лишь небольшие передвижения, связанные с сезонными изменениями гидрологического режима реки или с поиском пищи, нерестом и залеганием на зимовку. Во время заморов (например, в Оби) наблюдается заход стерляди в глубокие затоны или подход ее к устьям тех притоков, вода которых богата кислородом.
Нерестится в период половодья – в мае начале июня. Нерестилища располагаются на каменистых грядах в зонах повышенных скоростей течений на глубине 3,5 м. Икрометание и развитие яиц заканчиваются до спада паводковой волны. После икрометания перемещается в прибрежные участки на откорм, где происходит массовый нерест осетра, икру которого стерлядь интенсивно выедает. Восстановление половых продуктов у самцов после нереста происходит через два года, а у самок — через 4–5 лет.
Развитие икры длится в зависимости от температуры воды от 6 до 11 суток. Быстро растет до 7–8-летнего возраста, а затем, с наступлением половой зрелости, ежегодные линейные приросты ее снижаются и стабилизируются на уровне 4 см в год. Самцы, как правило, становятся половозрелыми при длине 40–45 см в возрасте 4–6 лет, самки – при длине 50–55 см в 7–14-летнем возрасте.
Одомашненная форма стерляди
Комплекс пород бестера

Литература
Абросимова Н.А., Абросимова Е.Б., Абросимова К.С. 2018. Оптимизация содержания молоди стерляди в зимний период. Мат. III нац. науч.- прак. конф. «Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации в свете импортозамещения и обеспечения продовольственной безопасности страны», с. 8–12.

Александров Я.В., Гашников М.П., Масликов В.П., Легкодимова З.И., Кияшко В.В. 2020. Получение жизнестойкой личинки стерляди в условиях экспериментального участка Саратовского филиала ФГБНУ «ВНИРО». Мат. V нац. науч.- прак. конф. «Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации», с. 9–13.

Амстиславский А.3. 1976. О морфологической и экологической изменчивости стерляди бассейна р. Оби. В сб.: Закономерности роста и морфологические особенности рыб в различных условиях существования, с. 51–59.

Аринжанов А.Е., Мирошникова Е.П., Килякова Ю.В. 2020. Токсические элементы в организме молоди стерляди на фоне введения в рацион ультрадисперсных частиц сплава Cu-Zn и пробиотического препарата. Мат. V нац. науч.-практ. конф. «Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации», с. 18–21.

Арчибасов А.А., Воробьев А.П., Данилова Е.А. 2018. Резорбция ооцитов стерляди (Acipenser ruthenus) в условиях индустриальных хозяйств. Мат. Всерос. науч.- прак. конф. «Водные биоресурсы и аквакультура Юга России», с. 311–314.

Афанасьев Ю.И. 1987. Биоэкологическая характеристика волжской стерляди в речных условиях и её искусственное воспроизводство. Автореф. дис. канд. биол. наук. Ленинград, 22 с.

Бабкина И.Б., Сусляев В.В., Блохин А.Н. 2016. Современное состояние запасов стерляди Acipenser ruthenus L. средней Оби. Мат. Всерос. конф. «Водные экосистемы Сибири и перспективы их использования», с. 6–9.

Базелюк Н.Н., Козлова Н.В., Макарова Е.Г. и др. 2014. Физиологические и генетические исследования стерляди (Acipenser ruthenus) в современных экологических условиях. Рыбное хозяйство, 3: 29–32.

Байдук Е.А. 2018. Современное состояние искусственного воспроизводства стерляди в Азово-Донском районе. Мат. Всерос. науч.- прак. конф. «Водные биоресурсы и аквакультура Юга России», с. 17–21.

Барулин Н.В. 2017. Обнаружение внешних полоспецифических признаков в строении производных кориума личинок и молоди стерляди Acipenser ruthenus. Доклады Национальной академии наук Беларуси, 61(1): 119–128.

Барулин Н.В. 2018. Прижизненная идентификация пола взрослой стерляди Acipenser ruthenus (Acipenseridae) по морфологическому строению спинных жучек. Вопросы ихтиологии, 58(1): 11–24.

Бахарева А.А., Грозеску Ю.Н. 2009. Особенности адаптации стерляди из естественной популяции к искусственным условиям. Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство, 2: 80–83.

Бахарева А.А., Грозеску Ю.Н., Пономарев С.В. 2015. Ускоренное формирование продукционных стад стерляди. Вестник НГАУ, 2: 101–106.

Бахарева А.А., Грозеску Ю.Н., Сырбулов Д.Н. 2008. Опыт доместикации «дикой» стерляди в условиях рыбоводного комплекса на Волжской ГЭС. Рыбное хозяйство, 6: 70–71.

Бахарева А.А., Жандалгарова А.Д., Грозеску Ю.Н., Неваленный А.Н., Егорова В.И. 2019. Особенности выращивания ремонтно-маточного стада осетровых рыб с применением нового высокоэффективного преднерестового комбикорма. Изв. Самарского НЦ РАН, 21(2): 169–174.

Бахарева А.А., Савичева Н.А., Колядов С.Д. 2018. Использование различных комбикормов для выращивания ремонтно-маточного стада стерляди. Мат. II Всерос. науч. конф. «Рыбохозяйственные водоемы России: фундаментальные и прикладные исследования», с. 515–520.

Бондарчук О.Л. 2016. Формирования адаптивного поведения молоди стерляди (Acipenser ruthenus L.) в зависимости от срока содержания в заводских бассейнах. Дис. канд. биол. наук. Борок, 117 с.

Булавин Е.Ф., Маратова Г.М., Асылбекова С.Ж. 2020. Опыт искусственного воспроизводства стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus) в условиях установки замкнутого водоснабжения (Мангистауская область). Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство, 3: 111–124.

Буяров В.С., Юшкова Ю.А. 2017. Организация профилактического кормления молоди стерляди с целью предупреждения возникновения алиментарных заболеваний в индустриальной аквакультуре. Материалы II нац. науч.-практ. конф. «Состояние и пути развития аквакультуры в Российской федерации в свете импортозамещения и обеспечения продовольственной безопасности страны». Санкт-Петербург, с. 5–9

Быков А.Д. 2003. Биология и искусственное воспроизводство стерляди верхней Оки. Автореф. дис. канд. биол. наук. Москва, 18 с.

Быков А.Д., Палатов Д.М. 2019. Особенности питания стерляди р. Оки. Труды ВНИРО, 175: 86–94.

Варенцова Е.Ю., Королькова М.С. 2018. Технология выращивания молоди стерляди (Acipenser ruthenus) в Мулинском рыбоводном хозяйстве Нижегородской области. Мат. Всерос. науч.- прак. конф. «Водные биоресурсы и аквакультура Юга России», с. 314–318.

Васюра О.Л. 2014. Особенности пищевого поведения молоди стерляди при прудовом и бассейновом подращивании в искусственных условиях. Известия КГТУ, 32: 21–30.

Величко М.С. 2009. Адаптационные возможности молоди стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) при выращивании в различных рыбоводных системах. Автореф. дис. канд. биол. наук. Калининград, 24 с.

Волосников Г.И. 2017. Обзор данных по биологии стерляди Acipenser ruthenus (Linnaeus, 1758). Вестник АГТУ, 2: 67–72.

Волосников Г.И. 2020. Характеристика размерных параметров молоди стерляди (Acipenser ruthenus L. 1758) реки Иртыш (Уватский район). Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство, 3: 18–26.

Гадлевская Н.Н., Столович В.Н., Тютюнова М.Н., Астренков А.В. 2009. Выживаемость личинок стерляди, подрощенных на опытных стартовых кормах. Вопросы рыбного хозяйства Беларуси, 25: 74–80.

Гадлевская Н.Н., Столович В.Н., Тютюнова М.Н., Астренков А.В. 2009. Питание сеголетков стерляди при выращивании в прудах в монокультуре. Вопросы рыбного хозяйства Беларуси, 25: 81–86.

Герасимов Ю.В., Васюра О.Л. 2013. Рост и питание молоди стерляди Acipenser ruthenus L. (Acipenseridae) в пруду при различной длительности предварительного содержания в бассейнах. Биология внутренних вод, 3: 64–72.

Герасимов Ю.В., Васюра О.Л. 2013. Формирование пищевого и оборонительного поведения молоди стерляди при искусственном воспроизводстве. Мат. II межд. науч. конф. «Воспроизводство естественных популяций ценных видов рыб», с. 98–101.

Голованов В.К., Герасимов Ю.В., Капшай Д.С., Васюра О.Л. 2014. Термоизбирание и термоустойчивость молоди стерляди Acipenser ruthenus L., выращенной в различных условиях. Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство, 1: 62–68.

Гранин А.В., Шакирова Ф.М., Таиров Р.Г. и др. 2020. Рост стерляди Acipenser ruthenus L. Куйбышевского водохранилища (по материалам 2012–2019 гг.). Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство, 3: 40–49.

Горбачева Л.Т., Горбенко Е.В., Панченко М.Г., Воробьева О.А., Павлюк А.А. 2019. Некоторые аспекты проблемы повышения эффективности разведения донской стерляди (Acipenser ruthenus) на ОРЗ Азово-Донского района. Труды АзНИИРХ, 2: 178–183.

Грозеску Ю.Н., Бахарева А.А., Кирьянов Д.А., Бондаренко А.В., Франов Н.А. 2019. Вкусоароматические добавки в составе комбикормов для выращивания осетровых рыб в системе замкнутого водообеспечения. Мат. Всерос. науч.- прак. конф. «Инновационные решения для повышения эффективности аквакультуры», с. 124–130.

Гуцулюк О.Н. 2014. Влияние пробиотических добавок на некоторые гематологические и рыбоводные показатели молоди стерляди. Мат. межд. науч. конф. «Актуальные вопросы рыбного хозяйства и аквакультуры бассейнов южных морей России», с. 171–173.

Данилова Е.А., Белобородова М.Н., Воробьев А.П., Чуракина И.В., Ефимович С.С. 2012. Морфологические особенности стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) при выращивании в различных условиях. Рыбное хозяйство, 4: 85–87.

Данилова Е.А., Мельченков Е.А. 2015. Экспериментальное выращивание стерляди в комбинированных условиях. Вопросы рыбного хозяйства Беларуси, 31: 77–84.

Егоров А.О. 2014. Морфо-биологические характеристики самок стерляди, выращенных в условиях повышенных температур в УЗВ. Мат. Всерос. науч.- прак. конф. «Технологический форсайт», с. 165–171.

Егоров А.О., Крымов В.Г., Вершинин С.И., Пашков А.Н. 2014. Некоторые морфо-биологические характеристики самок стерляди, выращенных в условиях повышенных температур воды в установке замкнутого водоиспользования. Мат. межд. науч. конф. «Актуальные вопросы рыбного хозяйства и аквакультуры бассейнов южных морей России», с. 177–180.

Ефимова Е.И., Бабкина И.Б., Бабкин А.М., Интересова Е.А. 2019. Возраст и рост стерляди Acipenser ruthenus L. в бассейне средней Оби (в пределах Томской области). Мат. V межд. науч. конф. «Современное состояние водных биоресурсов», с. 74–77.

Заделенов В.А. 2007. Сохранение и воспроизводство стерляди енисейской популяции – перспективного объекта осетрового хозяйства России. Рыбное хозяйство, 1: 86–89.

Зайцев В.Ф., Ростовцев А.А., Бессараб А.С. 2013. Состояние и перспективы естественного и искусственного воспроизводства сибирской стерляди Acipenser ruthenus marsiglii Brandt среднего Иртыша. Мат. II межд. науч. конф. «Воспроизводство естественных популяций ценных видов рыб», с. 144–147.

Зыков Л.А., Герасимов Ю.В., Абраменко М.И. 2017. Оценка промыслового возврата стерляди Acipenser ruthenus Нижней Волги от молоди искусственного воспроизводства. Вопросы рыболовства, 18(4): 422–437.

Калмыков В.А. 2005. Миграции, распределение, структура популяции и запасы стерляди (Acipenser ruthenus L.) Нижней Волги. Автореф. дис. канд. биол. наук. Москва, 23 с.

Калмыков В.А., Рубан Г.И., Павлов Д.С. 2009. О популяционное структуре стерляди Acipenser ruthenus (Acipenseridае) из нижнего течения Волги. Вопросы ихтиологии, 49(3): 380–388.

Калмыков В.А., Рубан Г.И., Павлов Д.С. 2010. Миграции и запасы стерляди Acipenser ruthenus (Acipenseridae) нижнего течения реки Волги. Вопросы ихтиологии, 50(1): 48–55.

Карагойшиев К.К. 2013. Опыт оценки запасов стерляди в водохранилищах при минимальной численности ее популяции. Рыбное хозяйство, 4: 67–71.

Киселева А.В., Ротанов И.М., Сартаков В.А. 2014. Влияние различных факторов на выживаемость икры стерляди. Мат. межд. науч. конф. «Рыбохозяйственные водоемы России: фундаментальные и прикладные исследования», с. 1235–1244.

Кожемякина Е.А., Ноздрин Г.А., Морузи И.В., Дорошенко Д.В., Пищенко Е.В. 2017. Влияние препарата «Аквапурин» на рост и развитие личинок стерляди (Acipenser ruthenus L.), выращиваемых в условиях установки замкнутого водоснабжения. Инновации и продовольственная безопасность, 4: 60–66.

Корчунов А.А. 2012. Особенности развития репродуктивной системы и нереста стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) при выращивании в установках замкнутого водообеспечения. Автореф. дис. канд. биол. наук. Новосибирск, 23 с.

Крохалевский В.Р., Бабкина И.Б., Визер А.М. и др. 2018. Состояние запасов осетровых рыб в водных объектах Сибири. Вопросы рыболовства, 19(3): 269–284.

Крючков В.И., Обухов Д.К., Новикова И.А. 2006. Влияние освещенности на морфо-функциональное развитие молоди стерляди Acipenser ruthenus. Вопросы рыболовства, 7(2): 277–288.

Кузьмина И.А. 2005. Рыбоводно-биологическая оценка вселения стерляди в Иваньковское водохранилище. Автореф. дис. канд. биол. наук. Москва, 23 с.

Легкодимова З.И., Сильникова Г.В., Масликов В.П. 2016. Оптимизация условий нагула маточного стада стерляди в прудах IV рыбоводной зоны с целью сокращения сроков созревания и повышения продуктивности. Мат. Всерос. конф. «Современное состояние биоресурсов внутренних водоемов и пути их рационального использования», с. 579–589.

Львов Л.Ф. 2005. Стратегия и тактика в формировании ремонтно-маточного стада стерляди. Мат. межд. науч.- прак. конф. «Аквакультура и интегрированные технологии: проблемы и возможности», с. 153–160.

Маммаев М.А., Шихшабеков М.М., Мирзаханов М.К., Маммаева Л.М. 2018. Оптимальная плотность посадки молоди стерляди, выращиваемой в установке с замкнутым циклом водоснабжения. Вестник ВГУ, Серия: Химия. Биология. Фармация, 3: 78–82.

Маммаев М.А., Шихшабеков М.М., Рабазанов Н.И., Курбанов М.С., Мирзаханов М.К., Маммаев Р.М., Гунашев Ш.А. 2017. Индустриальные методы культивирования стерляди (Acipenser ruthenus) в условиях Дагестана. Юг России: экология, развитие,12(3): 33–42.

Нефедов С.А., Мельченков Е.А., Нефедова И.В., Чертихина Е.А. 2009. Рыбоводно-биологическая характеристика обского осетра (Acipenser baerii Brandt) и иртышской стерляди (Acipenser ruthenus marsiglii Brandt) при выращивании в индустриальных условиях. Вопросы рыболовства, 10(2): 347–351.

Никишкин И.В., Левашов В., Законнова Л.И. 2018. Исследование эффективности искусственных и живых кормов, применяемых при выращивании молоди Acipenser ruthenus в условиях тепловодного рыбного хозяйства. Инновации в технологиях и образовании, ч. 2, с. 8–11.

Павлов А.Д. 2012. Изменения морфологических и хозяйственно-полезных признаков у стерляди (Acipenser ruthenus L.) при воспроизводстве в искусственных условиях (УЗВ). Автореф. дис. канд. биол. наук. Москва, 24 с.

Павлов А.Д., Есавкин Ю.И., Власов В.А. 2011. Экстерьерные признаки дикой и доместицированной стерляди среднего течения реки Оки. Мат. межд. науч.- прак. конф. «Развитие аквакультуры в регионах: проблемы и возможности», с. 136–144.

Подушка С.Б. 2014. Массовое переопределение пола у самцов стерляди в условиях аквакультуры. Мат. межд. науч. конф. «Актуальные вопросы рыбного хозяйства и аквакультуры бассейнов южных морей России», с. 259–260.

Подушка С.Б., Армянинов И.В. 2008. Опыт формирования и эксплуатации икорно-товарного стада стерляди в Кармановском рыбхозе. Осетровое хозяйство, 1: 2–5.

Поляков А.В., Конькова А.В. 2017. Содержание молоди стерляди в садках, установленных в открытых водоемах Астраханской области. Материалы II нац. науч.-практ. конф. «Состояние и пути развития аквакультуры в Российской федерации в свете импортозамещения и обеспечения продовольственной безопасности страны». Санкт-Петербург, с. 134–141

Пономарева Е.Н., Лужняк В.А., Пономарев С.В., Лужняк О.Л. 2009. Проблема сохранения и восстановления популяции стерляди Acipenser ruthenus (Acipenseriformes, Acipenseridae) в бассейне реки Дон. Рыбоводство и рыбное хозяйство, 6: 10–20

Пономарева Е.Н., Металлов Г.Ф., Корчунов А.А., Ковалева А.В. 2012. Особенности развития репродуктивной системы донской стерляди в зарегулированных условиях водной среды. Известия Самарского научного центра РАН, 14(5): 190–193.

Пономарева Е.Н., Неваленный А.Н., Белая М.М., Красильникова А.А. 2017. Использование криоконсервированной спермы для формирования маточного стада стерляди. Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство, 4: 118–127.

Пономарева Е.Н., Сорокина М.Н., Григорьев В.А., Ковалёва А.В., Корчунов А.А. 2010. Результаты разработки методов формирования маточных стад стерляди в условиях замкнутого водообеспечения. Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство, 1: 86–91.

Пономарева Е.Н., Сорокина М.Н., Григорьев В.А., Ковалева А.В., Корчунов А.А. 2016. Методы управления репродуктивной функцией осетровых рыб для целей искусственного воспроизводства. Мат. Всерос. науч.- прак. конф. «Морские биологические исследования: достижения и перспективы», т. 3, с. 427–431.

Распопов В.М., Мищенко А.В. 2012. Стерлядь реки Волги. Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство, 1: 92–98.

Русакова М.А., Хохлова М.А. 2018. Технология выращивания стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) в установках с замкнутым водообменом на примере Можайского производственно-экспериментального рыбоводного завода в Московской области. Мат. Всерос. науч.- прак. конф. «Водные биоресурсы и аквакультура Юга России», с. 387–390.

Сементина Е.В., Серпунин Г.Г. 2011. Рыбоводно-биологическая и гематологическая характеристика ремонтно-маточного стада стерляди, выращиваемой в установках замкнутого водоснабжения. Рыбное хозяйство, 4: 76–78.

Симонов В.М., Калмыков Л.В. 2005. Идентификация стерляди и ее гибридов по комплексу морфометрических признаков. Мат. межд. науч.- прак. конф. «Аквакультура и интегрированные технологии: проблемы и возможности», т. 2, с. 238–243.

Смирнов А.К. 2009. Избираемая температура молоди стерляди Acipenser ruthenus L. Мат. XXVIII межд. конф. «Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера», с. 511–514.

Сорокина Н.В., Лозовский А.Р. 2012. Разработка норм кормления стерляди продукционным комбикормом с использованием стандартной модели массонакопления. Естественные науки, 1(42): 75–81.

Сырбулов Д.Н., Пузанков И.В. 2005. Возможность использования различных вкусовых добавок при кормлении стерляди. Мат. межд. науч.- прак. конф. «Аквакультура и интегрированные технологии: проблемы и возможности», т. 2, с. 302–305.

Таиров Р.Г., Шакирова Ф.М., Северов Ю.А., Калайда А.Э., Горшков А.М. 2016. Современное состояние стерляди Куйбышевского водохранилища, возможности и задачи для восстановления и поддержания ее запасов. Мат. Всерос. конф. «Современное состояние биоресурсов внутренних водоемов и пути их рационального использования», с. 1005–1012.

Хандожко Г.А. 2009. Влияние естественной кормовой базы и искусственного кормления на продуктивность стерляди в IV зоне рыбоводства. Автореф. дис. канд. биол. наук. Ульяновск, 23 с.

Хрусталев Е.И. 2010. Сравнительная оценка раскрытия ростовой и адаптогенной потенции у окской, камской и нижневолжской стерляди в условиях УЗВ. Рыбное хозяйство, 6: 83–85.

Хрусталев Е.И., Величко М.С., Хайновский К.Б. 2008. Особенности выращивания сеголетков стерляди в бассейнах и садках при высоком фоне температуры и активной реакции воды. Рыбное хозяйство, 2: 80–81.

Хрусталев Е.И., Гончаренок О.Е. 2019. Обоснование алгоритма выращивания стерляди по комбинированной технологии. Мат. VII межд. науч. конф. «Водные биоресурсы, аквакультура и экология водоемов», с. 78–82.

Хрусталев Е.И., Курапова Т.М. 2018. Результаты выращивания разновозрастной стерляди в УЗВ. Мат. VI межд. науч. конф. «Водные биоресурсы, аквакультура и экология водоемов», с. 55–60.

Хрусталев Е.И., Курапова Т.М., Молчанова К.А. 2016. Особенности кормления стерляди в УЗВ. Мат. IV межд. науч. конф. «Водные биоресурсы, аквакультура и экология водоемов», с. 128–130.

Хрусталев Е.И., Курапова Т.М., Молчанова К.А., Абдулрахман З.Х. 2017. О целесообразности изменения режима кормления стерляди в УЗВ. Технологии пищевой и перерабатывающей промышленности АПК, 2: 29–34.

Хрусталев Е.И., Курапова Т.М., Савина Л.В., Сементина Е.В., Величко М.С. 2008. Оценка влияния условий выращивания на иммуно-физиологическое состояние сеголетков стерляди. Рыбное хозяйство, 2: 82–83.

Чепуркина М.А., Коваленко А.И., Семенова И.Н. 2012. Биотехнология выращивания товарной стерляди на геотермальных водах юга Западной Сибири. Сибирский вестник сельскохозяйственной науки, 1: 77–84.

Юрина Н.А., Максим Е.А., Данилова А.А. 2017. Эффективность использования пробиотических продуктов при выращивании стерляди. Материалы II нац. науч.-практ. конф. «Состояние и пути развития аквакультуры в Российской федерации в свете импортозамещения и обеспечения продовольственной безопасности страны». Санкт-Петербург, с. 180–182.

Патент на изобретение № 2496314 РФ. Хрусталев Е.И., Головтеев А.В. Способ выращивания товарной стерляди.

Патент на изобретение № 2496313 РФ. Хрусталев Е.И., Головтеев А.В. Способ выращивания половозрелой стерляди для получения пищевой черной икры.

Патент на изобретение № 2496312 РФ. Хрусталев Е.И., Головтеев А.В. Способ формирования и эксплуатации маточного стада стерляди.

Патент на изобретение № 2496311 РФ. Хрусталев Е.И., Головтеев А.В. Способ выращивания посадочного материала стерляди.

Рыбоводно-биологические результаты садкового выращивания рыбопосадочного материала стерляди Текст научной статьи по специальности «Сельское хозяйство, лесное хозяйство, рыбное хозяйство»
УДК 639.3.
И.Ю. Киреева
канд. биол. наук, доцент, кафедра гидробиологии, Национальный университет биоресурсов и природопользования Украины, г. Киев
Р.О. Громок
магистр, рыбохозяйственный факультет, Национальный университет биоресурсов и природопользования Украины, г. Киев
РЫБОВОДНО-БИОЛОГИЧЕСКИЕ РЕЗУЛЬТАТЫ САДКОВОГО ВЫРАЩИВАНИЯ РЫБОПОСАДОЧНОГО МАТЕРИАЛА СТЕРЛЯДИ
Аннотация. Изложены рыбоводно-биологические результаты получения рыбопосадочного материла стерляди садковым методом. При подращивании молоди в бассейнах группа «лидеров» достигла стандартной навески 3 г на 16 дней раньше нормативного срока. Тенденция сохранения высокого темпа роста у данной группы сохранилась и при их выращивании в садках. За весь период выращивания «лидеры» достигли массы 70 г, что превышала таковую у мелких рыб на 19 г. План по получению молоди стерляди был выполнен на 100% при рыбопродуктивности 12,5 кг/м2.
Ключевые слова: молодь, предличинка, личинка, стерлядь, садки, бассейны, комбикорм, темп роста, навеска, выход, рыбопродуктивность.
I.Yu. Kireeva, National University of Life and Environmental Sciences of Ukraine, Kiev
R.O. Gromok, National University of Life and Environmental Sciences of Ukraine, Kiev
FISH BREEDING AND BIOLOGICAL OUTCOMES OF STARLET CAGE STOCKING MATERIAL
Abstract. Set out the fish-biological results obtain fish stocking material starlet cage method. When raising young individuals in the basins of the group «leaders» have reached the standard sample 3 g 16 days before the regulatory period. The tendency to maintain the high growth rate in this group survived and when they are grown in cages. For the whole period of cultivation «leaders» have reached a weight of 70 g, which was higher than that in small fish at 19 g. Plan on getting young starlet was performed on 100% when fish productivity 12.5 kg/m2.
Keywords: juvenile, larva, larva, sterlet, cages, pools, feed, growth rate, suspension, withdrawal, fish productivity.
Современный запас осетровых видов на Украине и ограниченный состав в ихтиофауне дает основание констатировать невозможность их природного воспроизводства. В этой связи обеспечение народонаселения высокоценной рыбной продукцией — актуальная задача осетроводства Украины. Одним из перспективных объектов выращивания является стерлядь. Разведение и выращивание стерляди в контролируемых условиях рыбных хозяйств, кроме получения товарной продукции, позволяет одновременно решить вопросы увеличения и пополнения запасов этого вида рыбы в водоемах бассейнов Днепра и Днестра.
Работа выполнялась на базе хозяйства ООО «Триполье» Киевской области, г. Украинка, 4 зона рыбоводства.
Объект исследования — стерлядь (Acipenser ruthenus L.). Выращивание проводилось в 2 этапа (бассейны, садки).
Цель исследований — анализ рыбоводно-биологических результатов интенсивной технологии выращивания молоди стерляди.
На ООО «Триполье» использовали закупленный рыбопосадочный материал стерляди (предличинки). Подращивание предличинок проводили бассейновым методом. Скорость подачи воды в басейнах — 10-15 л/мин. Основные гидрохимические показатели также соответствовали нормативам: содержание кислорода и рН среды изменялись в диапазоне 7-8,9 мг/л, рН и 6,57,5 соответственно. Температура воды варьировала от 18 до 220 С.
Перед зарыблением бассейнов молодь адаптировали к температурным условиям емкостей для выращивания. Всего на подращивание было посажено 50 тыс. экз. предличинок стерляди при плотности посадки 5 тыс. экз/м2. При выращивании молоди в бассейнах проводилась их механиче-
ская очистка для оптимизации условий выращивания. За 52 суток подращивания личинок в бассейнах появление каких-либо заболеваний не наблюдалось. Кормление личинок стерляди в бассейнах начали на вторые сутки после зарыбления стартовым комбикормом «Aller Futura» и науплиями артемии (в соотношении 80:20) через каждые 2 часа вручную. Для получения науплий яйца артемий инкубировали в модифицированных аппаратах Вейса (V=100 л) в 3-5% растворе поваренной соли при содержании кислорода не ниже 6-7 мг/л и температуре воды 27-30° С. На 1 л солевого раствора вносили 10 г яиц. Выклев науплий проходил через 24-30 часов (рис. 1).
Рисунок 1 — Аппараты для инкубации яиц артемий
Норма кормления личинок постоянно корректировалась по поеданию кормов и данным темпа роста. В течение первых 7 дней подращивания предличинок в бассейнах проводился особо тщательный контроль за темпом роста (каждые 2 суток) с целью сортировки и выявлению лидеров. По полученным данным, рыбу регулярно сортирововали для снижения плотности посадки и во избежание конкуренции между крупными и мелкими экземплярами стерляди, которые менее конкурентоспособны.
Для анализа темпа роста рыбы нами было выбрано два экспериментальных бассейна: № 1 и № 2, в которых выращивались более крупные особи стерляди — «лидеры» — и мелкие особи — «мелкие», соответственно (рис. 2). Морфометрическому анализу подвергались 25 экз. 1|. \\ МАССА, МГ уХ—■—■-
II I |
3 5 сутки 7
Рисунок 2 — Диаграмма роста молоди стерляди в первые дни подращивания в бассейнах
■ Лидеры
■ Отстающие по росту
Выявлено, что при увеличении массы тела молоди относительный темп роста у рыб снижался. С учетом морфометрических показателей плотность посадки рыбы в бассейнах уменьшали и в конце срока выращивания молоди она сократилась до 2,5 тыс. экз. В целом, группа лидеров достигла стандартной массы тела 3 г за 36 суток подращивания личинок стерляди в бассейнах, в то время как отстающая в росте группа мелких экземпляров достигла такой же навески только на 52 сутки выращивания, т.е. с разницей в 16 суток. За период выращивания в бассейнах было израсходовано 146 кг стартовых комбикормов и 2 кг яиц артемий.
Учет подросшей молоди стерляди проводился весовым методом. Выход подросшей молоди из бассейнов составил 37,5 тыс. экз. при навеске 3 г, что соответствовало нормативным требованиям. За весь период выращивания личинок стерляди в бассейнах отход составил 25%, что не превысило нормативных требований.
Выращивание сеголеток стерляди в ООО «Триполье» проводилось садковым методом при плотности посадки 300 экз./м2, или 7,2 тыс. экз. на один садок. Зарыбление садков молодежью стерляди начали в июне. Лидеры были посажены на выращивание на 36-е сутки, т.к они достигли стандартной навески раньше. Всего на выращивание в садки было посажено 37,5 тыс. экз. 3-х граммовой молоди стерляди. В садках молодь интенсивно кормили вручную с кормовых столиков кормом «Aller Aqua 45/15» при постоянном контроле за его поеданием. Контроль за темпом роста проводили раз в 15 суток (не менее 25 экз.). Одновременно рыбу сортировали по размерам, отбирая меньших.
Анализ данных темпа роста сеголеток стерляди в садках показал, что за первый месяц выращивания прирост лидеров составил 12 г, что на 7 г больше, чем в мелкой группе. Следует отметить, что в июне набор массы тела в мелкой группе был минимальным за весь срок их выращивания в садках. В июле лидеры продолжали набирать массу тела, и их прирост за этот месяц составил 15 г. Отмечалось увеличение темпа роста в группе мелких рыб, у которых за июль навеска увеличилась в среднем на 10 г. Максимальный прирост как «лидеров», так и «мелкой» рыбы наблюдался в августе, когда этот показатель достиг 16 г и 14 г соответственно. В сентябре произошло снижение анализируемого показателя в обеих группах на 2 г, что объясняется сезонным падением температуры воды. В октябре темп роста рыбы в садках продолжал снижаться. При этом в группе мелких рыб прирост массы тела не превышал 7 г, что было на 3 г меньше, чем в группе лидеров.
Несмотря на разницу в весовых показателях обеих опытных групп рыб, динамика темпа их роста была равномерной в течение всего периода наблюдений. Лидеры достигли стандартной навески (50 г) уже в сентябре, а «мелкие» таких же показателей массы тела достигли только в конце периода выращивания. При этом суточная норма кормления колебалась от 3 до 8% в зависимости от массы рыбы и температуры воды. За весь период выращивания сеголеток стерляди в садках всего было потрачено 2700 кг корма. В целом, за весь период выращивания «лидеры» достигли массы 70 г, а «мелкие» — 51 г. При выращивании молоди в садках у отдельных экземпляров сеголеток отмечались заболевания диплостоматозом и аргулезом. Для профилактики и уничтожения промежуточных хозяев переносчиков диплостоматоза рекомендуется вселение в водоем черного амура, который питается малакофауной.
Учет выращенных сеголеток стерляди в садках проводили поштучно. Всего за период выращивания получено 30.000 экземпляров сеголеток стерляди средней навеской 60,5 г при отходе 20%, что соответствовало нормативным требованиям. Кормовой коэффициент для стартовых и продукционных комбикормов составил соответственно 1,3 и 1,5 кормовых единиц. План по получению сеголеток стерляди в садках ООО «Триполье» был выполнен на 100%. Рыбопродуктивность достигла 12,5 кг/м2. Рентабельность ООО «Триполье» достигла 34,2%.
Список литературы:
1. Алимов С.1., Андрющенко А.1. Осетрiвництво: навч. noci6. — К.: Видавничий центр НАУ, 2008. — 502 с.: т.
2. Матишов Г.Г. Опыт выращивания осетровых рыб в условиях замкнутой системы во-дообеспечения для фермерских хозяйств / Матишов Г.Г., Пономарева Е.Н. [и др.]. — Ростов-на-Дону: Изд — ЮНЦ РАН, 2006. — 72 с.
3. Михеев П.В. Садковое рыбоводство на водохранилищах / П.В. Михеев, Е.В. Петенец, В.П. Михеев. — М.: Пищевая промышленность, 1976. — 128 с.
4. Шерман 1.М. Еколого-технолопчы основи вщтворення i вирощування молодi осетроnодiбних: монографiя / Шерман I. М., Шевченко В.Ю., Корыенко В.О., 1гнатов О.В. — Херсон: Олднплюс, 2009. — 348 с.
5. Шевченко В.Н. Нормативно-методическое указание по технологии формирования ремонтно-маточных стад осетровых в садках / В.Н. Шевченко, А.А. Попова. — А.: Изд-во Касп-НИРХ, 2009. — 34 с.
Выращивание осетровых
Выращивание осетровых
Осетровые рыбы высоко ценятся за их мясо и икру. Большинство осетровых рыб нагуливается в море, а в реки возвращаются для икрометания. Эти рыбы очень древнего происхождения, их предки плавали еще в морях Юрского периода. Их следы находят в меловых отложениях. Своеобразен вид этих рыб, они имеют голое веретенообразное тело, покрытое рядами костных пластинок — жучек. Это бескостные рыбы, центральный позвоночный столб их представляет собой хрящевую хорду. Голова рыб вытянута за счет рыла (рострум). Рот расположен внизу. Перед ртом на рыле расположены 4 уса, служащие рыбе при поиске пищи.
Практически все осетровые ведут донный образ жизни, питаясь червями, моллюсками, личинками насекомых, рыбой и т.п. Привязанность к дну определяет район их нагула на шельфе морей с глубиной до 100 м. Исключение составляет один вид осетра — веслонос, способный питаться фито- и зоопланктоном, который он добывает путем фильтрации воды через жабры.
Осетровые рыбы образуют также жилые пресноводные формы, совершающие миграции в реках без выхода в море.
Некогда все реки и моря северного полушария Земли были заселены осетровыми. В Германии, в Гамбурге еще в середине прошлого века существовал рынок осетров, на котором продавалось 4 — 5 тыс.шт половозрелых рыб в год, выловленных рядом, в устье Эльбы. Значительный урон популяциям осетров нанес хищнический лов в густозаселенных районах Европы и Америки. Самый ощутимый удар по популяциям осетров нанесли плотины электростанций, перегородившие пути естественного хода этих рыб на нерест вверх по большим рекам.
В начале XX века основная масса осетров, имеющая хозяйственное значение, обитала в Каспийском, Черном и Азовском морях и была связана с Волгой и Доном. Строительство плотины Волгоградской электрической станции отрезало рыбе путь к местам нереста, расположенным на 2000 км выше по течению. В порядке компенсации этого ущерба впервые в СССР, а затем и в Америке построены осетровые заводы, занимающиеся отловом производителей, получением половых продуктов, инкубацией икры, выдерживанием личинок и подращиванием молоди. Подращенная молодь выпускается либо непосредственно в реку, откуда изымались производители, либо доставляется в эстуарий на места дальнейшего нагула. Такая технология позволила на многие годы сдержать угасание промысловых видов осетровых в СССР. Однако, раздел водных пространств, служащих для нагула осетров, между государствами, возникшими после распада СССР, нарушили процессы регулирования в этой области. Пресс на существующие популяции увеличился.
Параллельно с нарастанием проблем получения потомства от производителей природных популяций возрастал интерес к созданию маточных стад осетровых в аквакультуре, служащих гарантированным источником получения половых продуктов для ведения товарного хозяйства. Такие хозяйства созданы и работают в России и Западной Европе. Возрастает интерес к этим видам и на Американском континенте,
БЕЛУГА и КАЛУГА — самые крупные представители осетровых рыб. Белуга населяет бассейны Каспийского, Азовского и Черного морей, а также восточную часть Средиземного моря. Ее масса достигает 1,5 т, а продолжительность жизни 100 лет. На нерест белуга поднимается в реки, где мечет клейкую икру, которая прикрепляется к камням. В Волге белуга поднималась до г. Калинина. Молодь белуги питается в реке беспозвоночными, а спускаясь в море — рыбой. Половозрелость у самцов белуги наступает в природе на 13 — 18 году жизни, у самок на 16 — 22 году. Повторный нерест, как у всех осетров, наступает через 2 — 3 года.
Калуга населяет бассейн реки Амур, далеко в море не уходит, достигает массы 1 т.
Для товарного выращивания белуги в аквакультуре лучше подходит морская вода, в пресноводных установках белуга растет медленно. Известны случаи роста белуги в пресной воде до массы 20 кг, с последующим созреванием рыбы созревание рыбы.
В начале XX века белуга, как объект рыболовства, имела большое хозяйственное значение, так как в общей массе улова осетровых она составляла 35% и в 1903 г. ее улов достиг 15 тыс.т. К 1922 г. улов белуги снизился до 300 т в год. В украинских реках и Дунае улов значительно ниже.
РУССКИЙ ОСЕТР — один из главных в хозяйственном отношении осетров. В природе русский осетр обитает главным образом в бассейнах Азовского, Черного и Каспийского морей. Известны также жилые формы этого вида, обитающие в р. Волге. Уловы этой рыбы снизились в XX веке с 4 — 10 тыс.т до 250 т в год.
Средняя масса выловленных осетров составляла 10 — 20 кг. Половая зрелость самцов наступает на 6 — 8 году жизни, самок — на 11 — 13 году. Повторное икрометание через три — пять лет.
Скрещивание русского осетра со стерлядью, севрюгой и белугой дает способные к размножению гибриды, пригодные для выпуска в природные водоемы на нагул и для хозяйственного выращивания в рыбоводных установках. Молодь русского осетра питается преимущественно в толще воды, позднее переходит на донный корм. В рыбоводных установках молодь легко переходит на питание искусственными кормами, поэтому этот вид успешно культивируется в садках, бассейнах и прудах. В природе он предпочитает солоноватые воды, богатые естественным донным кормом (моллюски, улитки, крабы, рыба).
Мясо русского осетра богато жиром и имеет прекрасный вкус, однако, желтоватый цвет мяса на всегда приемлем для потребителей.
СИБИРСКИЙ ОСЕТР также успешно культивируется в рыбоводных хозяйствах. В природе населяет реки от Оби до Колымы, образует жилые пресноводные формы. Максимальная длина свыше 2 м, масса — 200 кг. В холодных водах сибирских рек растет очень медленно, однако, в тепловодной аквакультуре скорость роста значительно увеличивается. В природе питается личинками водяных насекомых, моллюсками, бокоплавами, рыбой. При выращивании хорошо поедает искусственный корм и растет практически в любых рыбоводных установках.
В природе сибирский осетр нерестится на галечном дне при температуре 11 — 15 ^оС. При низкой температуре воды в полярной зоне созревание самцов наступает в 19 — 24 года, самок — в 25 — 30 лет. Повторное созревание наступает у самцов через 2 — 3 года, у самок — через 3 — 5 лет. Длительность жизни 60 лет. В условиях Западной Европы при относительно высоких температурах созревание сибирского осетра наступает за 4 — 7 лет.
Потомство сибирского осетра показывает высокую приспосабливаемость к изменению температурного режима и условиям содержания. Охотно переходит на питание искусственными кормами. Годится для выращивания в прудах, садках и рыбоводных установках. Рекомендуется как самый пластичный вид для выращивания в аквакультуре.
СТЕРЛЯДЬ — обитатель пресноводных водоемов, любимое место обитания в реке — это углубления с заиленным или гравийным дном. В старицах, водохранилищах и озерах она находится в местах со слабым течением. На сильном течении стерлядь не растет. Ранее она часто встречалась в среднем и нижнем течении рек, впадающих в Каспийское, Черное и Азовское моря. На запад стерлядь распространяется до средней Европы (Дунай), на севере населяет большие реки, впадающие в моря Ледовитого океана.
Масса стерляди в среднем достигает 4 — 8 кг, известны случаи до 20 кг. Живет 22 года. Созревание самцов происходит в три года, самок в 3 — 4 года, интервал икрометания по большей части 2 года. Самцы дают сперму каждый год. Это самый мелкий вид осетров. При длине 40 — 50 см рыбы имеют массу 250 — 400 г.
Искусственным разведением стерляди занимались более ста лет назад вне связи с падением численности популяции. В настоящее время перелов этой рыбы может быть возмещен только искусственным воспроизводством.
В природе стерлядь питается беспозвоночными, личинками комаров, ракообразными, иногда рыбой. В аквакультуре легко переходит на искусственный корм, и может хорошо расти при плотных посадках в бассейнах и садках. При выращивании стерляди в прудах (Германия) за три года она достигала массы 250 — 800 г и становилась половозрелой.
Хозяйственное значение стерляди в связи с сильным пере ловом во внутренних водоемах незначительно, хотя еще в 1935 — 39 г.г. общий ее улов составлял 750 — 800 т в год, причем на Волгу выпадало 700 т. СЕВРЮГА — важнейший в хозяйственном отношении вид осетра. В 1991 г. в астраханском районе Волги было поймано 4130 т севрюги, в то время как белуги только 331 т. Главный район распространения севрюги лежит в Каспийском море. В Азовском и Черном морях имеются значительные популяции, и только местами этот вид заходит в Адриатику. Нерест в реках наступает при температуре 13 — 15 ^оС. Молодь и взрослые рыбы обитают и питаются при температуре от 4 до 28 ^оС. Продолжительность жизни до 20 лет. Самцы созревают в 4 — 6 лет, самки в 8 — 9 лет. Повторный нерест через 2 — 3 года. Икряные самки имеют массу 10 — 15 кг.
ВЕСЛОНОС — единственный из осетров, способный питаться первичной продукцией водоемов — фито- и зоопланктоном. В природе живет в Северной Америке в речной системе Миссисипи. В СССР завезен в 1974 г для акклиматизации в тепловодных хозяйствах.
Рыба имеет гладкую кожу без характерных для осетров костных наростов (жучек). Примечательный нос занимает 1/3 длины тела. Рот рыбы очень велик, широко открывается и не имеет зубов. Зубы у веслоноса имеются только в личиночном состоянии. Кожные выросты, прикрывающие жабры, вытянуты назад и заканчиваются остро. Жаберный аппарат приспособлен для фильтрации планктона и других кормовых частиц размером более 0,025 мм. Процесс фильтрации веслонос осуществляет, плавая через толщу воды с широко открытым ртом.
Веслонос достигает массы 80 кг при длине 2 — 3 м. Половое созревание самцов наступает в 5 — 9 лет, самок в 8 — 12 лет при длине 1 — 1,2 м. Самцы созревают каждые 1 — 2 года, самки 2 — 4 года.
В прудах веслонос выращивается вместо толстолобика и белого амура как дополнительная рыба в поликультуре с карпом или другими видами осетровых. При выращивание в прудах осетров, также как и при выращивании карпа, возникает проблема очистки воды от бурно развивающихся микроводорослей, зоопланктона и высшей растительности. Для этой цели обычно используется белый и пестрый толстолобик и белый амур, которые высаживаются в пруд с карпом в определенном соотношении. Среди осетровых только один веслонос обладает способностью фильтровать из воды фито- и зоопланктон и питаться им, показывая хорошие приросты массы. Эта рыба, также как толстолобик и белый амур, размножается только в искусственных условиях, но обладает рядом уникальных свойств, а, главное, имеет на рынке более высокую цену, чем белый амур и толстолобик.
Климат зон, в которых зимний период длится 4 — 5 месяцев и возможен ледостав до 100 дней в году, пригоден для выращивания веслоноса в открытых водоемах.
В карповых прудах веслонос потребляет обычно фито- и зоопланктон, но в его питание входят также донные осадки и крупные водоросли. Как карп он может выкапывать корм из почвы, а также охотно поедает сухие гранулированные корма, зерно, отруби и т.п. Широкий спектр питания веслоноса определяет его высокую скорость роста, самую высокую по сравнению с другими полезными рыбами, выращиваемыми в пруду. Сеголетки веслоноса достигают в пруду массы 400 г и более, в то время как сеголетки карпа в этом же пруду набирают массу только 25 г. На втором году выращивания веслонос набирает массу 1,6 кг, а лидеры — 3 кг. На третий год выращивания средняя масса велоноса достигает 3,5 кг, на четвертый — 6 — 8 кг. На четвертый год выращивания часть самцов становится половозрелой, а самки созревают обычно на два года позже.
Веслонос потребляет корм и с поверхности воды, и в толще воды, и со дна. Температурный оптимум для него 18 ^оС, но при +8 ^оС он продолжает активно питаться. Особенностью веслоноса является такое устройство жаберного аппарата, которое заставляет его непрерывно двигаться, чтобы иметь возможность дышать, в то время как другие виды осетровых могут обеспечить свое дыхание, находясь в покое.
Мясо и икра веслоноса имеют высокое качество и, соответственно, высокую цену на рынке.
Процесс инкубирования икры и выращивания личинок веслоноса незначительно отличается от процесса выращивания других видов. Однако, безопасной для высаживания в открытые пруды считается молодь, достигшая размера 15 — 20 см. Более мелкая молодь ориентируется на поверхностный образ жизни, имея слабую реакцию на опасность с воздуха и становится легкой добычей рыбоядных птиц. Проблема возникает в связи с тем, что молодь веслоноса берет корм с поверхности воды. Чтобы взять его, ей требуется перевернуться светлым брюшком вверх и подплывать к корму спиной вниз. Это демаскирует молодь.
ГИБРИДЫ ОСЕТРОВЫХ нашли применение в аквакультуре наравне с чистыми видами. Часто гибридные формы превосходят родителей по весьма ценным в аквакультуре показателям: активности поиска и потребления корма, скорости роста, устойчивости к заболеваниям.
Бестер — гибрид, полученный в результате осеменения икры белуги спермой стерляди. Возможно также осеменение икры белуги спермой бестера. Гибриды (белуга ´ бестер) растут активнее бестера. Бестер, обладая свойствами белуги в отношении массы и скорости роста, он пригоден для выращивания в пресноводных водоемах.
Гибрид (шип ´ севрюга) был получен в поисках формы, пригодной для освоения пресных водоемов водохранилищ, в которых практически исчезли проходные виды осетровых.
Гибрид имеет массу до 30 кг и созревает раньше родительских форм. Скрещивается не только о родительскими формами, но и с другими видами осетровых. Молодь гибрида (шип ´ севрюга) по жизнестойкости и другим показателям превысила другие виды осетровых рыб.
МАТОЧНОЕ СТАДО в аквакультуре формируется из особей, выращенных в искусственных условиях и приученных брать искусственные гранулированные корма. В одновозрастной группе самцы созревают быстрее самок. Зрелые самки, как правило, крупнее самцов и отличаются увеличенным мягким брюхом. Окончательное заключение о степени зрелости рыбы делается на основании результатов обработки щуповых проб. С помощью специального щупа из тела самки извлекают икринки, фиксируют их, разрезают и под микроскопом определяют стадию зрелости икры по положению ядра. Соотношение зрелых самцов и самок в стаде подбирают 3:1. Количество рыб в стаде подбирается в соответствии с планом предприятия.
При выращивание производителей в тепловодном хозяйстве получение качественной икры становится возможным только в случае имитации зимнего периода. Для этой цели за два — три месяца до нереста производителей отсаживают в холодную воду. Отсутствие гидрологической зимы ведет к дестабилизации годовых и сезонных циклов созревания половых желез и к ухудшению качества потомства.
Чтобы получить синхронный нерест производителей, проводится их инъецирование ацетонированным гипофизом из расчета для самок 3 мг на 1 кг массы, для самцов — 2 мг на 1 кг массы. Концентрация суспензии — 10 мг сухого вещества гипофиза на 1 мл физиологического раствора. После инъецирования производителей содержат при постоянной температуре или в режиме повышения температуры. Момент готовности самки (переход икры в овуляции) определяется осмотром и надавливанием на брюхо.
ПОЛУЧЕНИЕ ИКРЫ. Анатомическое строение половой системы самок осетровых не позволяет сцеживать овулировавшую икру таким способом, как это делается у карпа и форели. Поэтому, для изъятия икры в брюхе рыбы делается разрез, через который икра извлекается. При этом рыба размещается и удерживается в специальном станке.
После завершения операции по изъятию икры разрез зашивается хирургическими нитками, а рыба возвращается в бассейн. Заживление происходит относительно долго, и не все рыбы выживают.
По методу, разработанному С.Б. Подушкой, икра на первоначальном этапе изымается сцеживанием, затем в генитальное отверстие самки вводится скальпель и делается надрез каудального отдела одного из яйцеводов. После этого икра легко сцеживается обычным путем.
Надрез яйцевода не вызывает кровотечения , так как он представляет собой тонкую полупрозрачную пленку. Рана получается незначительной и скоро заживает. Выживаемость рыб близка к 100%.
Сперму для осеменения икры берут от трех самцов, сцеживают в ковш или с помощью катетера сразу в стаканчик. Отцеженную сперму следует оберегать от попадания воды и хранить в прохладном затененном месте.
Смесь спермы готовят из расчета 10 мл на 1 кг икры, разводят водой в 200 раз и сразу же вливают в икру. Осеменение длится три минуты при равномерном помешивание перьями. По окончание осеменения икру дважды промывают водой и обесклеивают. Для приготовления 10 л суспензии для обесклеивания используют мел или тальк 150 — 200 г и поваренную соль 15 — 20 г. Пригодно также цельное и сухое молоко 2 л и 200 — 250 г соответственно, а также речной ил — 0,5 л, Продолжительность обесклеивания 50 — 60 мин.
ИНКУБИРОВАНИЕ ИКРЫ. Для оснащения инкубационных заводов по воспроизводству молоди были разработаны и используются аппараты «Осетр» емкостью до 3 млн. икринок. При инкубации меньшего количества икры используются аппараты Вейса. Основное требование к системе подготовки воды для инкубации — тщательная дегазация воды во избежание газо-пузырьковой болезни личинок. Оптимальная температура воды для инкубации подбирается в зависимости от вида осетра в пределах 13 — 18 ^оС.
Со второго дня инкубации и в дальнейшем через день проводят профилактическую обработку икры против сапролегниоза. Применяют раствор метиленовой сини в разведении 1:100000, время экспозиции 30 мин. Отбор погибшей и зараженной икры проводят периодически.
Выклюнувшихся личинок размещают по заранее заготовленным лоткам.
РАЗВИТИЕ ЛИЧИНОК. Эмбрионы осетровых имеют большой желточный мешок, непропорционально большую голову и слаборазвитые внутренние органы. Глаза отмечены только пигментными пятнами. Движение личинок очень напоминает движение головастиков. Личинки реагируют на свет, движутся в толще воды и опускаются на дно, где часто образуют скопления — рои.
При оптимальной температуре 19-22 ^оС личинки примерно 7 дней развиваются за счет энергии, получаемой из желточного мешка, затем постепенно переходят на внешнее питание. Кормом личинок на этой стадии служат мелкие водные организмы: моины, дафнии и др. При отсутствии живого корма личинки опускаются на дно и потребляют донные отложения, извлекая из них определенные микроорганизмы и частички органического вещества. С началом питания личинок проглоченный корм вытесняет, так называемый, эмбриональный кал (желточную пробку). В силу того, что желудочно-кишечный тракт личинок имеет сложное строение, возможны нарушения пищеварения с последующей гибелью.
Питание личинок на первом этапе обязательно должно состоять из живых организмов. Это могут быть и личинки артемии салина, которых инкубируют из яиц в соответствующих инкубаторах.
Для размещения личинок осетра используют относительно длинные (до 4 м), узкие (0,5 — 0,8 м) лотки с небольшой глубиной воды до 15 — 20 см и незначительным течением. Для подращивания личинок пригодны также круглые и квадратные бассейны площадью до 4 кв.м. с круговым током воды. Соблюдение мер защиты от ухода личинок из лотков и бассейнов с током воды обязательны. Плотность посадки личинок от 3 до 5 тыс.шт на кв.м. При нижних значениях плотности в указанном интервале скорость роста личинок выше. Однако, снижение плотности посадки личинок до 1 тыс.шт на кв.м ведет к ухудшению показателей.
Личинки весьма плохие пловцы и их может прижимать течением к сеткам, защищающим выход воды. Удивительна способность личинок, уходить из лотков через мельчайшие отверстия. Поэтому, на выходе воды из бассейнов желательно устанавливать приспособления для облова личинок.
Лотки периодически подвергаются чистке от биологических обрастаний, а в случае необходимости, и дезинфекции.
Когда личинки осетра достигают размера 2,5 см, артемия для них становится слишком мелким кормом. В это время личинки начинают расширять свой рацион за счет донных осадков. Они ныряют вниз, разрывают носом кучки и добывают себе корм. Через 14 суток после перехода на питание донными осадками личинки готовы потреблять искусственные гранулированные корма с размером гранул до 100-120 мкм.
При длине 3,5-4 см осетры становятся крепкими и стойкими к внешним воздействиям. Их можно рассаживать по бассейнам и переводить на кормление исключительно готовыми гранулированным кормами. Без проблем переходят на кормление гранулированными кормами стерлядь, сибирский осетр, белуга бестер, веслонос. У других видов переход на питание искусственными кормами затруднен.
Рост и кормление молоди стерляди Acipenser ruthenus L. (Acipenseridae) в пруду после разного времени предварительного содержания в резервуарах
1.
Бакштанский Е.Л., Задорина В.М., Лоенко А.А. Особенности нерестового хода и особенности рыбоводного хозяйства и дикой молоди лосося в р. Лувеньга, в Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера: Матер. Семинара (Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера: Учеб.Мастерская. Петрозаводск, 1981. С. 147–150.
Google ученый
2.
Бизольд Д. Согласованные закономерности ранних стадий развития мозга // Роль сенсорного притока в созревании функций мозга. . М .: Наука. 1987, с. 5–10.
Google ученый

Болдина И.К. О кормлении осетровых рыб Горьковского водохранилища // Тр.Inst. Биол. Водохран. , Москва: Изд. Акад. АН СССР, 1961, вып. 4 (7), стр. 272–280.

Google ученый

Болдина И.К. Некоторые особенности биологии стерляди Куйбышевского водохранилища // Биология рыб Волжских водохранилищ . М .: Наука, 1966. С. 119–130.

Google ученый

Волохов, А.А., Шимко И.А. Функциональное и структурное развитие мозга в обогащенной среде // Развивающийся мозг и среда . М .: Наука, 1980. С. 9–38.

Google ученый

Герасимов Ю.В., Васюра Л.Е., Стрельникова А.П. Современное состояние запасов стерляди в водоемах Верхней Волги и перспективы их искусственного воспроизводства // Состояние популяции стерляди. Состояние популяций стерляди в водоемах России и пути их стабилизации. М .: Федерал.Агентство по Рыболовству, 2004, с. 59–74.

Google ученый

Герасимов Ю.В. , Столбунов И.А. Влияние насыщенности экологической информацией в период раннего развития леща ( Abramis brama ; Cyprinidae) на пищевое и защитное поведение его сеголетков // J. Ichthyol. , 2007, т. 47, нет. 3. С. 246–253.

Артикул Google ученый

Драгомиров Н.И. Основные особенности возрастных изменений поведения личинок осетровых рыб // Докл. Акад. АН СССР , 1953, т. 93, нет. 4. С. 725–728.

Google ученый

Желтенкова М.В. Кормление осетровых в южных морях // Тр. Всерос. НИИ Рыб. Хоз. Океаногр. , 1964, т. 54. С. 9–48.

Google ученый

10.

Закора, Л.П., Кормление стерляди в Волгоградском водохранилище и использование им кормовых ресурсов водоема, Автореф. Sci. Биол. Наук, , Ленинград: Гос. НИИ Озерная Речь. Рыб. Хоз., 1974.

Google ученый

11.

Капкаева Р.З. , Хайбуллина Д.А. Кормление стерляди в условиях зарегулированного течения реки Волги // Осетровое хозяйство водоемов СССР . Астрахань: КаспНИИ рыб.хоз-ва, 1989 г., ч. 1, с. 130–131.

Google ученый

12.

Касимов Р.Ю., Сравнительная характеристика поведения заводской и дикой молодой осетровых в раннем онтогенезе

Google ученый

13.

Касимов Р.Ю., Обухов Д.К., Рустамов Е.К. Особенности постэмбрионального формирования переднего мозга и условных рефлексов у осетровых рыб // Вопр. Ихтиол. , 1986, т. 26, вып. 3. С. 427–434.

Google ученый

14.

Касумян, А.О. и Кажлаев А.Л. Поведенческий ответ молоди осетровых рыб на естественные химические пищевые сигналы // Хемочувствительность и хемокоммуникация рыб . М .: Наука, 1989. С.167–174.

Google ученый

15.

Касумян, А.О. А., Кажлаев А.А. Формирование поискового поведенческого ответа и обонятельной чувствительности к пищевым химическим сигналам в онтогенезе осетровых рыб (Acipenseridae) // Вопр. Ихтиол. , 1993, т. 33, нет. 2. С. 271–280.

Google ученый

16.

Киселев А.Ю. Биологические основы и технологические принципы разведения и выращивания аквакультуры в рециркуляционных системах.) Диссертация , Москва, 1999.

Google ученый

17.

Лукин А.В. Основные особенности экологии осетровых в Среднем Поволжье // Тр. Общ. Естествиспыт. при казани. Univ. , 1947, т. 57, №№ 3–4, часть 1, с. 45–104.

Google ученый

18.

Мильштейн В.В., Осетроводство (Осетроводство), Москва: Легк. Пищ.Пром., 1982.

Google ученый

19.

Митанс, А.Р., Поведение, кормление и рост заводской молоди после выпуска в реку, в Рыбохозяйственные исследования в бассейне Балтийского моря , Рига, 1970, с. нет. 7. С. 108–111.

Google ученый

20.

Ненашев Г.А., Блинов Ю.В., Клевакин А.А., Минин А.Е. Состояние запасов и перспективы восстановления численности осетровых в Чебоксарском водохранилище // Состояние популяции стерляди в водоемах России и пути их стабилизации . и пути их стабилизации. М .: Федерал. Агентство по Рыболовству, 2004, с. 193–201.

Google ученый

21.

Никольская М.П. Развитие ампулярной рецепторной системы у осетровых рыб (Chondrostei, Acipenseriformes) и ее функциональное значение // Сигнализация и поведение рыбы. .Кольск. Fil. Акад. АН СССР, 1985. С. 46–56.

Google ученый

22.

Никоноров С.И., Витвицкая Л.В., Эколого-генетические проблемы искусственного воспроизводства осетровых и лососевых рыб . Google ученый

23.

Новоселов, А.П., Стерлядь бассейна реки Северная Двина, в кн. Состояние популяций стерляди в водоемах России и пути их стабилизации , Москва: Федеральный. Агентство по Рыболовству, 2004, с. 160–173.

Google ученый

24.

Павлов Д.С., Сбикин Ю.Н., Попова И.К. Роль органов чувств в кормлении молоди осетровых рыб // Зоол. Журн.Ж. , 1970, т. 49, нет. 6. С. 872–880.

Google ученый

25.

Протасов В.Р., Бондарчук А.И., Ольшанский В.М. Введение в электроэкологию . М .: Наука, 1982.

. Google ученый

26.
Рождественская А.Д. Выращивание стерляди в прудах в Некоторые вопросы осетрового хозяйства Каспийского бассейна , Москва: Центр.НИИ Осетр. Хоз., 1966, с. 40–41.
Google ученый

27.
Смирнов А.К. Выбор температуры молоди стерляди Acipenser ruthenus L., в Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера: Матер. XXVIII Междунар. конф . Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера: Материалы XXVIII Международной конференции. Петрозаводск, 2009. С. 142–145.
Google ученый

28.
Смирнова, Е.С. , Герасимов Ю.В. Влияние условий среды в период раннего онтогенеза на формирование защитного поведения молоди плотвы Rutilus rutilus (Cyprinidae), J. Ichthyol. , 2010, т. 50, нет. 1. С. 127–136.
Артикул Google ученый

29.
Стрельникова А.П. Кормление молоди стерляди (Acipenser ruthenus, Acipenseridae) в среднем течении Дуная, J.Ихтиол. , 2012, т. 52, нет. 1. С. 85–90.
Артикул Google ученый

30.
Суховерхов Ф.М., Королева В.М., Писаренкова А.С. Особенности выращивания и зимнего содержания стерляди в прудах // Избр. Тр. Всерос. НИИ Пресновод. Рыб. Хоз. , 2002 г., часть 1, т. 1,2, стр. 41–48.
Google ученый

31.
Фабри К.Е., Основы зоопсихологии . М .: Изд.Моск. Гос. Ун-т, 1976.
Google ученый

32.
Фомин Г.П. Кормление молоди стерляди в прудах // Тр. Гос. НИИ Озер. Речь. Рыб. Хоз. , 1983, № 208. С. 89–95.
Google ученый

33.
Черфас Б.И., Рыбоводство в естественных водоемах , М .: Пищепромиздат, 1956.
Google ученый

34.
Шустов Ю.А., Щуров И.Л., Смирнов Ю.А. О сроках адаптации заводской молоди атлантического лосося к речным условиям // Вопр. Ихтиол. , 1980, т. 20, нет. 4 (123).
Google ученый

35.
Орлов А.В., Герасимов Ю.В., Лапшин О.М. Кормление культурных и диких атлантических лососей, Salmo salar (L.), в реке Лувенга, Кольский полуостров, Россия , ICES J.Mar. Sci. , 2006, т. 63. С. 1297–1303.
Артикул Google ученый

Стерлядь для пруда

Синонимы:

Acipenser aleutensis Fitzinger, 1836 (синоним неоднозначен)
Acipenser dubius Brusina, 1902 (неоднозначный синоним)
Acipenser gmelini Fitzinger, 1836
Acipenser jenisensis Herzenstein, 1895 (неоднозначный синоним)
Acipenser kamensis Lovetsky, 1834
Acipenser kankreni Duméril, 1870
Acipenser kostera Fitzinger, 1832
Аципенсер ловецкий Дюмерль, 1870
Acipenser marsiglii Brandt, 1833
Acipenser pygmaeus Pallas, 1814
Acipenser ruthenicus Brusina, 1902 (синоним неоднозначен)
Acipenser ruthensis Linnaeus, 1758 (орфографическая ошибка)
Acipenser ruthenus alba Antipa, 1909
Acipenser ruthenus albinea Brusina, 1902
Acipenser ruthenus birostrata Brusina, 1902
Acipenser ruthenus brevirostris Antipa, 1909 (синоним неоднозначен)
Acipenser ruthenus erytraea Antipa, 1909
Acipenser ruthenus grisescens Brandt, 1853
Acipenser ruthenus leucotica Brandt, 1853
Acipenser ruthenus obtusirostris Brusina, 1902
Acipenser ruthenus rutzskyi Johansen, 1946
Acipenser ruthenus ruzskyi Johansen, 1946 (орфографическая ошибка)
Acipenser ruthenus septemcarinata Brusina, 1902
Стерлядь Acipenser Брусина, 1902 г. (синоним неоднозначен)
Sterledus ruthenus sibiricus Dybowski, 1874

предоставлено: www.sturgeon-pond.info/blog/sterlet-acipenser-ruthenus/index.html

Стерлядь (Acipenser ruthenus) — распространенный евразийский вид осетровых, один из самых мелких видов осетровых. Это обычный домашний вид в Великобритании и Европе, а также ловля рыбы во всем мире. Его также можно выращивать для употребления в пищу, для изготовления икры или стекла.

Стерлядь (Acipenser ruthenus) от Кареля

Расположение:

Этот осетр населяет реки, впадающие в следующие моря: Каспийское, Черное, Азовское, Балтийское, Белое, Баренцево, Карское, и обитает как в Черном, так и в Каспийском морях, а также поднимается по рекам на большее расстояние от моря, чем любое другое. осетровые; так, например, это не редкость для Дуная в Вене, но экземпляры были пойманы так же высоко, как Регенсбург и Ульм.Более распространен в реках России. Еще в 18 веке предпринимались попытки завезти эту ценную рыбу в Швецию и провинцию Пруссия, но безуспешно.

Внешний вид:

Стерлядь может достигать веса 16 кг и длины от 100 до 125 см, редко превышая длину 3 фута. Окраска может быть весьма разнообразной, но обычно имеет желтоватую брюшную сторону. Он отличается от других европейских видов осетровых по наличию большого количества беловатых боковых щетинок, бахромчатых усиков и удлиненной и узкой морды, сильно изменяющейся по длине.

Привычки кормления

Основным источником питания стерляди являются бентосные организмы; они обычно питаются ракообразными, червями и личинками насекомых.

Общие имена

Стерлядь-альбинос, стерлядь, стерлядь Осетрина

Срок службы

Стерлядь обычно достигает возраста от 22 до 25 лет.

Половая зрелость

Мужчины: 3-7 лет, женщины: 5-12 лет

Плодовитость

Самки могут отложить от 15 000 до 44 000 яиц.

Период нереста

Середина апреля — конец мая — начало июня.

Требования к нересту

Взрослые особи, достигшие половой зрелости. Температура воды желательно 12-17 ° С.

Прудовая рыба

стерляди есть в магазинах аквариумистов. Они предпочитают пруды среднего и большого размера, нуждаются в хороших водных условиях и могут запутаться в растениях, тростнике или других водорослях. Это очень дружелюбная рыба; когда они подрастут, они с радостью высовывают носы из воды, чтобы вы могли их коснуться.В дикой природе их естественная пища включает ракообразных и моллюсков, в неволе им нужна специальная пища, такая как кормовые гранулы для осетровых / стерлядей Orchard Fisheries, чтобы гарантировать, что они получают все необходимые питательные вещества для поддержания здоровья.

Стерлядь (Acipenser ruthenus) от Кареля

Купить кормовые гранулы для выращивания осетровых и стерлядей для садоводства

Повадки дикой стерляди

Считается, что дикая стерлядь даже вкуснее, чем обычная стерлядь, вероятно, из-за широкого диапазона их рациона.Дикие стерлядь — условно-патогенные хищники, поедающие креветок, крабов, червей и мелкую рыбу, а иногда добавляя в нее водоросли, когда они в отчаянии. Они часто сидят на дне озер и рек, скользят по грязи в поисках пищи. Они также могут заходить в пещеры. Также они питаются новорожденными и молодыми стерлядями. Стерлядь редко пойдет на добычу крупнее 10 сантиметров.

Таксономия:

Королевство: Животные
Тип: Chordata
Подтип: позвоночные
Суперкласс: Osteichthyes
Класс: Actinopterygii
Подкласс: Chondrostei
Заказ: Acipenseriformes
Подзаказ: Acipenseoidi
Семья: Acipenseridae
Подсемейство: Acipenserinae
.
Род: Acipenser
Вид: Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758

Стерлядь (Acipenser ruthenus)

, предоставлено:

Стерлядь-альбинос (Acipenser ruthenus)

Стерлядь (Acipenser ruthenus), вероятно, является самым медленнорастущим и, следовательно, лучшим видом для садового пруда.

Он вырастает «всего» до 1,2 м в дикой природе, но обычно до 1 м в среднем пруду, хотя отдельные экземпляры могут различаться по размеру, иногда достигая только 60 см.

Хорошая рыбка для новичка. Он принадлежит к тому же семейству осетровых, что и осетровые стеллатус, сибирский, итальянский и алмазный.

Стерлядь-альбинос идеально подходит для пруда, так как максимальный размер 1 м достигается только в течение длительного периода времени.

Дополнительная оксигенация в летние месяцы необходима.Стерлядь плохо переносит сильнодействующие методы лечения, например, формалин.

Описание:

Acipenser ruthenus имеет 11-18 спинных щитков, 56-71 боковых щитков, 10-20 брюшных щитков, 32-54 луча спинного плавника и 16-34 луча анального плавника.

Морда длинная и заостренная, с бахромчатыми усиками, нижняя губа расщеплена.

Цвет от темно-коричневого до серого, иногда с темно-зеленым оттенком на спине, с белыми краями плавников и брюшком.Щитки бледнее по цвету, чем окружающая кожа, и по всему телу видны белые щитки.

Настоящий осетр, который часто продается как «карликовая стерлядь»; Стерлядь может достигать 1,2 м и 16 кг веса. Цвет стерляди-альбиноса может варьироваться от чисто белого до оранжево-коричневого.

Они медленнее растут и немного меньше, достигая максимального размера 1 м, но в остальном обладают теми же характеристиками, что и обычные цветные разновидности.

Стерлядь (Acipenser ruthenus) (вверху) с белыми краями плавников и щитками отличается от более однородной окраски сибирского осетра (Acipenser baerii) (вниз)

Acipenser ruthenus часто путают с сибирским осетром (Acipenser baerii), поскольку они очень похожи по форме. Наиболее заметными отличиями являются белые края грудных (передних) плавников, более светлые щитки и белые скатические линии, которые хорошо видны вдоль тела Acipenser ruthenus; щитки и щитки Acipenser baerii того же цвета, что и окружающая их кожа, а плавники не имеют белых краев.

Рекомендуемый размер пруда:

Стерлядь нормальная окраска (Acipenser ruthenus)

Стерлядь
можно хранить в прудах объемом 1000–2000 галлонов (4500–9000 литров) в течение многих лет, но чем больше, тем лучше, рекомендуется 2000–3000 галлонов (9000–13500 литров), если вы хотите сохранить рыбу в зрелом возрасте.
Продовольствие и кормление:
Осетровые НЕ, как некоторые думают, не едят банкетную травку и не «чистят дно пруда».Кормить осетровых нужно круглый год, летом им нужно 2-3% массы тела качественной пищи в день, зимой меньше.
Здоровый рацион осетровых должен содержать высокий уровень животного белка, для осетровых требуется минимальное содержание белка 40% и уровень масла 15% или более. Небольшой процент белка можно получить из сои, но большая часть должна быть из рыбной муки или других источников животного происхождения.
Гранулы для осетровых рыб:
2 мм гранулы для закваски для осетровых рыб, 10-20 см (4-8 дюймов)
3мм гранулы Осетр 20-36см (8-14 дюймов)
4.Гранулы 5 мм — осетровые размером 30-50 см (12-20 дюймов) Гранулы 6 мм Осетровые 36-61 см (14-24 дюйма) Гранулы 8 мм Осетровые более 61 см (24 дюйма)
Stellatus (Acipenser stellatus) и стерлядь (Acipenser ruthenus) имеют меньшее горло; используйте для них меньший размер.
Для получения дополнительной информации о кормлении осетровых посетите нашу страницу «Корм и кормление осетровых».
Стерлядь (Acipenser ruthenus
)
Проблемы со здоровьем:
Наиболее распространенные проблемы со здоровьем осетровых связаны с питанием и / или кислородом, правильно сделайте эти две жизненно важные вещи, и ваши осетры должны оставаться в хорошей форме и здоровыми.
Используйте кислородный тестовый набор, чтобы убедиться, что в воде достаточно кислорода. Следуйте инструкциям, прилагаемым к набору, чтобы гарантировать правильные результаты. Не думайте, что воздуха много только потому, что у вас работает воздушный насос. Многие вещи могут повлиять на количество растворенного кислорода в воде, поэтому тестирование — единственный способ убедиться. Теплая вода содержит меньше кислорода, чем холодная, поэтому будьте бдительны в жаркую погоду, особенно в бурные ночи, когда уровень кислорода может внезапно упасть до опасно низкого уровня.
Кормите осетра достаточным количеством подходящего корма круглый год. Для получения дополнительной информации о кормлении осетровых посетите нашу страницу «Корм и кормление осетровых».
Избегайте сильных химических обработок, таких как формалин / формальдегид, перманганат калия, сульфат меди или любых других средств, запрещенных для использования с Golden Orfe (Leciscus sp.) Или Rudd (Scardinius reythrophathalmus), они, вероятно, убьют вашего осетра. Соль — самый безопасный способ лечения осетровых рыб.Для получения дополнительной информации о лечении осетровых посетите нашу страницу «Лекарства и лечение осетровых».
Обеспечивает наилучшее качество воды для рыб. Работайте с насосом и фильтрацией круглый год и держите запасной резервный насос на случай выхода из строя основного насоса. Для получения дополнительной информации о качестве воды см. Нашу страницу «Качество воды».
Wild распространение:
Стерлядь — потамодромный (только пресноводный) вид, обитающий в материковой части Восточной Европы и Западной Азии, населяющий реки, впадающие в Черное, Азовское и Каспийское моря; Сибирь от Оби на восток до Енисея.Основные нерестилища находятся в системах рек Волга, Урал и Дунай.
Аквакультура привела к преднамеренной и случайной интродукции по всей Европе, но самоподдерживающихся популяций не сформировалось. Стерлядь занесена в Красный список исчезающих видов МСОП как «уязвимый».
Таксономия:
Королевство: Животные
Тип: Chordata
Подтип: позвоночные
Суперкласс: Osteichthyes
Класс: Actinopterygii
Подкласс: Chondrostei
Заказ: Acipenseriformes
Подзаказ: Acipenseoidi
Семья: Acipenseridae
Подсемейство: Acipenserinae
Род: Acipenser
Вид: Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758
Распространенные названия: стерлядь-альбинос, стерлядь, стерлядь, осетр
Стерлядь (Acipenser ruthenus)
Стерлядь (Acipenser ruthenus)
Стерлядь и стерлядь-альбинос Acipenser ruthenus
Гибрид осетровой белуги и стерляди-альбиноса
Стерлядь, осетры, кои, орфе и другие прудовые рыбы в формате Full HD
Пруд с карпами кои — Восточный Йоркшир — Продажа осетровых и стерлядей
Стерлядь, стерлядь-альбинос, алмаз и сибирский осетр.
Стерлядь-альбинос (Acipenser ruthenus) KoiCompetence
российских инкубаториев возродили рынок черной икры
Благодаря усилиям нескольких государственных российских рыбоводных заводов по восстановлению популяции стерляди (Acipenser ruthenus) в реках страны, этот вид изменил свой статус и, по мнению российских властей, больше не считается среди исчезающих видов.
В результате цена на черную икру на рынке упала до одного из самых низких уровней.
Российские нефтегазовые гиганты обязаны компенсировать любой вред, который их промышленные предприятия могут нанести окружающей среде, путем подписания контрактов с инкубаториями на разведение мальков рыб, которые будут выпущены в реки.
За последние три-четыре года, в рамках этих экологических кампаний, российские инкубаторы начали разводить стерлядь в «невообразимых количествах», сообщает московский аналитический центр Russian Business Consulting.
Стерлядь исторически считалась в России «блюдом царей».Стоимость одной молоди стерляди составляет около 30 рублей (0,40 доллара США). Для нефтегазовых компаний это одна из самых дешевых рыб для разведения для выполнения своих обязательств по охране окружающей среды, добавили в Russian Business Consulting.
В результате «ежегодно в реки России выпускаются десятки миллионов мальков стерляди». Стерлядь находилась на грани исчезновения в 2000-х годах из-за масштабного браконьерства, поэтому правительство ввело запрет на их ловлю.
Теперь все изменилось, так как быстро растущая популяция старлетки может уничтожить кормовую базу леща (Abramis), карася (Carassius carassius) и щуки (Esox lucius), сообщает российское информационное агентство Primechanye со ссылкой на рыбака Ивана Овечкина. .
Цена на черную икру на московском рынке может достигать 60 000 рублей (900 долларов США) за кг. Если ограничения на отлов стерляди будут сняты, цены могут упасть до 20 000 рублей (300 долларов США), тем более что экологическая кампания, направленная на увеличение популяции стерляди в стране, вряд ли в ближайшее время завершится, по мнению Примечания.
По хромосомной окраске в геноме стерляди (Acipenser ruthenus) выявлена сегментарная палеотетраплоидия | Молекулярная цитогенетика
1.
Бирштейн В.Дж., ДеСалле Р. Молекулярная филогения Acipenserinae. Mol Phylogenet Evol. 1998. 9 (1): 141–55. DOI: 10.1006 / mpev.1997.0443.
CAS Статья PubMed Google ученый
2.
Людвиг А., Белфиоре Н.М., Питра С., Свирски В., Дженнекенс И. События удвоения генома и функциональное снижение уровней плоидности у осетровых (Acipenser, Huso и Scaphirhynchus). Генетика. 2001. 158 (3): 1203–15.
PubMed Central CAS PubMed Google ученый
3.
Sallan LC. Основные вопросы происхождения биоразнообразия лучепёрых рыб (Actinopterygii). Биол Ред. 2014; 89 (4): 950–71. DOI: 10.1111 / brv.12086.
Артикул PubMed Google ученый
4.
Бирштейн В.Ю., Васильев В.П. Тетраплоидно-октоплоидные отношения и кариологическая эволюция в порядке acipenseriformes (Pisces) — кариотипы, ядрышки и области ядрышка-организатора у 4 видов Acipenserid. Genetica. 1987. 72 (1): 3–12.DOI: 10.1007 / Bf00126973.
Артикул Google ученый
5.
Acipenser ruthenus. http://sveb.unife.it/it/ricerca-1/laboratori/geneweb/acipenser-ruthenus. По состоянию на 13 ноября 2015 г.
6.
Fontana F, Congiu L, Mudrak VA, Quattro JM, Smith TI, Ware K, et al. Доказательства гексаплоидного кариотипа у коротконосого осетра. Геном. 2008. 51 (2): 113–9. DOI: 10.1139 / g07-112.
CAS Статья PubMed Google ученый
7.
Фонтана Ф, Ланфреди М., Чикка М., Айелло В., Росси Р. Локализация повторяющейся теломерной последовательности (TTAGGG) n у четырех видов осетровых. Chromosome Res. 1998. 6 (4): 303–6.
CAS Статья PubMed Google ученый
8.
Фонтана Ф., Ланфреди М., Конгиу Л., Лейс М., Чикка М., Росси Р. Хромосомное картирование генов 18S-28S и 5S рРНК с помощью двухцветной флуоресцентной гибридизации in situ у шести видов осетровых. Геном. 2003. 46 (3): 473–7.DOI: 10.1139 / g03-007.
CAS Статья PubMed Google ученый
9.
Флинн С.Р., Мацуока М., Райт М., Мартин-Робишо Д.Дж., Бенфей Т.Дж. Гиногенез и определение пола у коротконосого осетра, Acipenser brevirostrum Lesuere. Аквакультура. 2006. 253 (1–4): 721–7. DOI: 10.1016 / j.aquaculture.2005.09.016.
Артикул Google ученый
10.
Sabre MH, Халладжян А.Изучение системы определения пола у судового осетра Acipenser nudiventris с использованием мейотического гиногенеза. Aquac Int. 2014; 22 (1): 273–9. DOI: 10.1007 / s10499-013-9676-z.
Артикул Google ученый
11.
Шелтон В.Л., Мимс С.Д. Доказательства определения гетерогаметного пола самок веслоноса Polyodon spathula на основе гиногенеза. Аквакультура. 2012; 356: 116–8. DOI: 10.1016 / j.aquaculture.2012.05.029.
Артикул Google ученый
12.
Фонтана Ф, Ланфреди М., Росси Р., Бронзи П., Арлати Г. Установленные клеточные линии трех видов осетровых. Осетр К. 1995; 3 (4): 6–7.
Google ученый
13.
Хавелка М., Каспар В., Хулак М., Флайшанс М. Генетика и цитогенетика осетровых: обзор уровней плоидности и межвидовой гибридизации. Folia Zool. 2011; 60 (2): 93–103.
Google ученый
14.
Раб П, Арефьев В.А. M. R. С-полосный кариотип стерляди Acipenser ruthenus из реки Дунай. Осетр К. 1996; 4 (4): 10–2.
Google ученый
15.
Fontana F. Хромосомные ядрышковые организаторные области у 4 видов осетровых как маркеры эволюции кариотипа у Acipenseriformes (Pisces). Геном. 1994; 37 (5): 888–92.
CAS Статья PubMed Google ученый
16.
Фонтана Ф, Ланфреди М., Чикка М., Конгиу Л., Тальявини Дж., Росси Р. Флуоресцентная гибридизация in situ с зондами рДНК на хромосомах Acipenser ruthenus и Acipenser naccarii (Osteichthyes Acipenseriformes). Геном. 1999. 42 (5): 1008–12. DOI: 10.1139 / ген-42-5-1008.
CAS Статья Google ученый
17.
Ланфреди М., Конгиу Л., Гарридо-Рамос М.А., де ла Эрран Р., Лейс М., Чикка М. и др. Хромосомное расположение и эволюция семейства сателлитных ДНК у семи видов осетровых.Chromosome Res. 2001. 9 (1): 47–52. DOI: 10,1023 / А: 1026739616749.
CAS Статья PubMed Google ученый
18.
Графодацкий А.С., Трифонов В.А., Станьон Р. Геномное разнообразие и эволюция кариотипа млекопитающих. Mol Cytogenet. 2011; 4:22. DOI: 10.1186 / 1755-8166-4-22.
PubMed Central Статья PubMed Google ученый
19.
Гуттенбах М., Нанда И., Файхтингер В., Масабанда Дж. С., Гриффин Д. К., Шмид М.Сравнительная окраска хромосом аутосомных красок цыплят 1–9 у девяти различных видов птиц. Cytogenet Genome Res. 2003. 103 (1-2): 173–84. DOI: 10,1159 / 000076309.
CAS Статья PubMed Google ученый
20.
Покорна М., Джованнотти М., Краточвил Л., Касаи Ф., Трифонов В.А., О’Брайен ПКМ и др. Сравнительная картина показывает сильную сохранность Z-хромосомы птицы в геномах рептилий, несмотря на расхождение в 275 миллионов лет.Хромосома. 2011; 120 (5): 455–68. DOI: 10.1007 / s00412-011-0322-0.
Артикул PubMed Google ученый
21.
Cioffi MD, Sanchez A, Marchal JA, Kosyakova N, Liehr T., Trifonov V, et al. Окраска всей хромосомы показывает независимое происхождение половых хромосом у близкородственных форм рыб. Genetica. 2011; 139 (8): 1065–72. DOI: 10.1007 / s10709-011-9610-0.
Артикул Google ученый
22.
Тиан Х, Азпуруа Дж., Хайн С., Вайдья А., Мякишев-Ремпель М., Аблаева Дж. И др. Гиалуронан с высокой молекулярной массой обеспечивает устойчивость голого землекопа к раку. Природа. 2013; 499 (7458): 346 – U122. DOI: 10,1038 / природа12234.
PubMed Central CAS Статья PubMed Google ученый
23.
Li MF, Marrayatt V, Annand C, Odense P. Культура рыбных клеток — 2 недавно разработанные клеточные линии атлантического осетра (Acipenser-Oxyrhynchus) и гуппи (Poecilia-Reticulata).Может J Zool. 1985. 63 (12): 2867–74.
Артикул Google ученый
24.
Фонтана Ф., Росси Р., Ланфреди М., Арлати Дж., Бронзи П. Цитогенетическая характеристика клеточных линий трех видов осетровых. Кариология. 1997. 50 (1): 91–5.
Артикул Google ученый
25.
Хедрик Р.П., Макдауэлл Т.С., Розмарк Р., Аронштейн Д., Ланнан С.Н.. 2 клеточные линии белого осетра.T Am Fish Soc. 1991. 120 (4): 528–34. DOI: 10.1577 / 1548-8659 (1991) 120 <0528: Tclfws> 2.3.Co; 2.
Артикул Google ученый
26.
Ван Г., ЛаПатра С., Цзэн Л., Чжао З., Лу Й. Создание, рост, криоконсервация и идентификация видов происхождения трех клеточных линий белого осетра, Acipenser transmontanus. Методы Cell Sci. 2003. 25 (3–4): 211–20.
PubMed Google ученый
27.
Фонтана Ф. Создание первичных клеточных линий осетровых рыб. В: Ozouf-Costaz C, Pisano E, Foresti F, Foresti L, Foresti de Almeida Toledo L, редакторы. Цитогенетические методы рыб (Chondrichthyans и Teleosts). Энфилд: CRC Press Inc; 2015. стр. 49–57.
Google ученый
28.
Станьон Р., Галлени Л. Метод быстрого культивирования фибробластов для кариотипов высокого разрешения. B Zool. 1991. 58 (1): 81–3.
Артикул Google ученый
29.
Вольф К., Ане В. Культура клеток рыб. В: Мараморош К., редактор. Достижения в культуре клеток. Нью-Йорк: Academic Press, Inc; 1982. с. 305–28.
Google ученый
30.
Rab P. Заметка о кариотипе стерляди, Acipenser ruthenus (Pisces, Acipenseridae). Folia Zool. 1986. 35 (1): 73–8.
Google ученый
31.
Фонтана Ф, Росси Р., Ланфреди М, Арлати Дж., Бронзи П.Кольцевание хромосом у осетровых рыб. J Appl Ichthyol. 1999; 15: 9–11.
Артикул Google ученый
32.
Медрано Л., Бернарди Дж., Кутюрье Дж., Дутрило Б., Бернарди Дж. Хромосомные бэнды и компартментализация генома у рыб. Хромосома. 1988. 96 (2): 178–83. DOI: 10.1007 / Bf00331050.
Артикул Google ученый
33.
Мейн Дж., Бейкер Р.Дж., Хобарт Х.Х., Хсу Т.С., Райдер О.А., Уорд О.Г. и др.Распределение нетеломерных сайтов теломерной последовательности (TTAGGG) n в хромосомах позвоночных. Хромосома. 1990; 99 (1): 3–10.
CAS Статья PubMed Google ученый
34.
Чарльзуорт Б., Сниговски П., Стефан В. Эволюционная динамика повторяющейся ДНК у эукариот. Природа. 1994. 371 (6494): 215–20. DOI: 10.1038 / 371215a0.
CAS Статья PubMed Google ученый
35.
Фонтана Ф., Ланфреди М., Киршбаум Ф., Гарридо-Рамос М.А., Роблес Ф., Форлани А. и др. Сравнение кариотипов Acipenser oxyrinchus и A. sturio по бэндингу хромосом и флуоресцентной гибридизации in situ. Genetica. 2008. 132 (3): 281–6. DOI: 10.1007 / s10709-007-9171-4.
Артикул PubMed Google ученый
36.
Cioffi MB, Martins C, Vicari MR, Rebordinos L, Bertollo LAC. Дифференциация половых хромосом XY у рыб hoplias malabaricus (Characiformes, Erythrinidae): необычное накопление повторяющихся последовательностей на X-хромосоме.Sex Dev. 2010. 4 (3): 176–85. DOI: 10,1159 / 000309726.
CAS Статья PubMed Google ученый
37.
Schemberger MO, Oliveira JI, Nogaroto V, Almeida MC, Artoni RF, Cestari MM, et al. Построение и характеристика библиотеки повторяющейся ДНК у Parodontidae (Atinopterygii: Characiformes): геномный и эволюционный подход к дегенерации w-половой хромосомы. Данио. 2014. 11 (6): 518–27. DOI: 10.1089 / zeb.2014.1013.
CAS Статья PubMed Google ученый
38.
Wang YM, Minoshima S, Shimizu N. Бэндинг Cot-1 хромосом человека с использованием флуоресцентной гибридизации in-situ с мечением Cy3. Jpn J Hum Genet. 1995. 40 (3): 243–52. DOI: 10.1007 / Bf01876182.
CAS Статья PubMed Google ученый
39.
Zhang L, Xu C, Yu W. Клонирование и характеристика хромосомных маркеров из библиотеки Cot-1 арахиса (Arachis hypogaea L.). Cytogenet Genome Res. 2012; 137 (1): 31–41. DOI: 10,1159 / 000339455.
CAS Статья PubMed Google ученый
40.
Оно С. Эволюция путем дупликации генов. Берлин Гейдельберг: Шпрингер; 1970.
Google ученый
41.
Фарлонг РФ, Голландия PWH. Полиплоидия в происхождении позвоночных: Оно и не только. Biol J Linn Soc. 2004. 82 (4): 425–30. DOI: 10.1111 / j.1095-8312.2004.00329.x.
Артикул Google ученый
42.
Галлардо М. Х., Бикхэм Дж. У., Ханикатт Р. Л., Охеда Р. А., Колер Н. Открытие тетраплоидии у млекопитающих. Природа. 1999; 401 (6751): 341. DOI: 10,1038 / 43815.
CAS Статья PubMed Google ученый
43.
Свартман М., Стоун Дж., Станьон Р. Молекулярная цитогенетика отвергает полиплоидию у млекопитающих. Геномика. 2005. 85 (4): 425–30.DOI: 10.1016 / j.ygeno.2004.12.004.
CAS Статья PubMed Google ученый
44.
Трифонов В.А., Паолетти А., Капуто Барукки В., Калинина Т., О’Брайен П.С., Фергюсон-Смит М.А. и др. Сравнительная окраска хромосом и распределение ЯОР предполагают сложное гибридное происхождение триплоидного lepidodactylus lugubris (Gekkonidae). PLoS One. 2015; 10 (7): e0132380. DOI: 10.1371 / journal.pone.0132380.
PubMed Central Статья PubMed Google ученый
45.
Birstein VJ, Hanner R, DeSalle R. Филогения Acipenseriformes: цитогенетический и молекулярный подходы. Environ Biol Fish. 1997. 48 (1–4): 127–56. DOI: 10,1023 / А: 1007366100353.
Артикул Google ученый
46.
Фонтана Ф., Тальявини Дж., Конгиу Л. Генетика и цитогенетика осетровых: последние достижения и перспективы. Genetica. 2001. 111 (1–3): 359–73. DOI: 10,1023 / А: 1013711919443.
CAS Статья PubMed Google ученый
47.
Тальявини Дж., Контерио Ф., Гандольфи Дж., Фонтана Ф. Последовательности митохондриальной ДНК шести видов осетровых и филогенетические взаимоотношения внутри Acipenseridae. J Appl Ichthyol. 1999. 15 (4–5): 17–22. DOI: 10.1111 / j.1439-0426.1999.tb00198.x.
CAS Статья Google ученый
48.
Dingerkus G, Howell WM. Кариотипический анализ и доказательства тетраплоидии у веслоноса в Северной Америке, Polyodon spathula. Наука. 1976, 194 (4267): 842–4.
CAS Статья PubMed Google ученый
49.
de la Herran R, Fontana F, Lanfredi M, Congiu L, Leis M, Rossi R, et al. Медленные темпы эволюции и гомогенизация последовательности в древнем семействе спутниковой ДНК осетровых. Mol Biol Evol. 2001. 18 (3): 432–6.
Артикул Google ученый
50.
Лемская Н.А., Романенко С.А., Голенищев Ф.Н., Рубцова Н.В., Саблина О.В., Сердюкова Н.А. и др.Хромосомная эволюция Arvicolinae (Cricetidae, Rodentia). III. Кариотипические отношения десяти видов Microtus. Chromosome Res. 2010. 18 (4): 459–71. DOI: 10.1007 / s10577-010-9124-0.
CAS Статья PubMed Google ученый
51.
Графодацкий А.С., Раджабли С.И. Хромосомы сельскохозяйственных и лабораторных млекопитающих. Новосибирск: Наука; 1988.
Google ученый
52.
Ijdo JW, Wells RA, Baldini A, Reeders ST. Улучшенное обнаружение теломер с использованием зонда с повторением теломер (TTAGGG) n, созданного с помощью ПЦР. Nucleic Acids Res. 1991; 19 (17): 4780.
PubMed Central CAS Статья PubMed Google ученый
53.
Maden BE, Dent CL, Farrell TE, Garde J, McCallum FS, Wakeman JA. Клоны рибосомной ДНК человека, содержащие полные гены 18 S-рРНК и 28 S-рРНК. Характеристика, подробная карта единицы транскрипции рибосом человека и разнообразие клонов.Biochem J. 1987; 246 (2): 519–27.
PubMed Central CAS Статья PubMed Google ученый
54.
Трифонов В.А., Воробьева Н.В., Ренс В. FISH с ДНК COT1 и без нее. В: Лир Т., редактор. Флуоресцентная гибридизация in situ (FISH) — руководство по применению. 2009. с. 99–112.
Google ученый
55.
Косякова Н., Хамид А.Б., Чавирач А., Пинтонг К., Сирипиясинг П., Супивонг В. и др.Создание многоцветных зондов с полосами для хромосом разных видов. Mol Cytogenet. 2013; 6: 6. DOI: 10.1186 / 1755-8166-6-6.
PubMed Central Статья PubMed Google ученый
56.
Ян Ф, Графодацкий А.С. Зонды на животных и флуоресценция ZOO-FISH in situ гибридизация (FISH). В: Лир Т., редактор. Флуоресцентная гибридизация in situ (FISH) — руководство по применению. Берлин: Спрингер; 2009. с. 323–47.
Google ученый
Прудовые осетровые. Факты и рекомендации (Что такое осетровые?)
Некоторые из современных осетровых видов существуют уже миллионы лет, и они бывают самых разных форм и размеров.
Осетровые принадлежат к семейству Acipenseridae и включают 27 видов осетровых, которые начали развиваться около 250 миллионов лет назад в триасовый период. Виды, которые присутствуют сегодня, существуют около 50 миллионов лет, это остатки исконных настоящих костистых рыб. Из этих 27 видов лишь небольшая часть из них считается пригодной для прудов и доступна для коммерческой продажи — белуга / большой осетр, сибирский осетр, стерлядь, севрюга и алмаз / русский осетр.Есть также множество гибридов, которые могут быть доступны для покупки в зависимости от того, где вы живете.
Осетровые считаются как доисторическими, так и примитивными, поскольку их внешний вид, а также общая физиология и морфология не сильно изменились по сравнению с нашими ранними ископаемыми записями о них. Их можно найти практически по всему миру, от холодных пресноводных субарктических рек и озер до более теплых морских прибрежных вод вдоль Европы и Северной Америки, поскольку разные виды адаптировались к разным местам.В Красном списке видов, находящихся под угрозой исчезновения МСОП, широко эксплуатируемые из-за их икры, большого размера и бронированной чешуи, семейство осетровых считается в настоящее время, пожалуй, наиболее вымирающим семейством, при этом 4 вида уже потенциально вымерли, а остальные находятся под угрозой исчезновения.
Диетические потребности и особенности кормления осетровых Осетровые считаются донными кормушками, что означает, что они будут есть со дна своей среды обитания — подобно креветкам, ракообразным, ракушкам и моллюскам.
Осетровые, живущие глубоко в воде, куда проникает очень мало света, считаются хищными бентическими кормушками, что означает, что они предпочитают питаться вещами, находящимися на дне водоемов. В природе это включает ракообразных, ракушек и моллюсков (например, моллюсков, креветок и мидий), других рыб, микро- и макробеспозвоночных, личинок насекомых, крабов и ракушек.
В их телах не хватает ферментов для расщепления растительной материи, поэтому, хотя они могут есть продукты на основе пшеницы или сои, которые им скармливают, они не смогут их переваривать и все равно станут худыми, истощенными и больными. .Диета с высоким содержанием белка имеет решающее значение! Обычно им нужно съедать от 2 до 3% веса тела каждый день, особенно если они все еще растут. Они также довольно медленные существа с плохим зрением (из-за эволюции, чтобы жить в глубоких тусклых водах), поэтому вам сначала нужно покормить других рыб, иначе они сожрут корм для осетровых, прежде чем у них появится шанс опуститесь на дно, чтобы осетр нашел его с помощью своих лицевых усиков.
На видео ниже показано типичное поведение осетровых в пруду при просмотре других рыб, таких как кои:
Продолжительность жизни, размер и темпы роста осетровых Осетровые растут очень медленно, но могут достигать огромных размеров и даже жить более 100 лет в правильных условиях.
Очень долгоживущие существа, нередко осетровые живут более 100 лет, хотя средняя продолжительность жизни приближается к 55 из-за чрезмерного вылова рыбы и деградации среды обитания. Эти долгая продолжительность жизни и медленные темпы роста являются одной из причин, по которым они находятся под такой угрозой — они не размножаются быстро и часто, поэтому им очень трудно оправиться от таких вещей, как чрезмерный вылов рыбы, загрязнение окружающей среды, браконьерство и среда обитания. потеря.
Фактическая скорость роста значительно варьируется от вида к виду, а также зависит от качества воды, рациона, скорости кормления и температуры.Эти факторы также предсказуемо влияют на продолжительность жизни. Как упоминалось выше, было обнаружено, что ежедневное кормление осетровых в количестве, эквивалентном 2-3% их живой массы, является наилучшей нормой кормления для оптимального роста и созревания. Кроме того, температура ниже 14 ° C замедляет темпы роста многих видов осетровых рыб. Для здорового роста лучше всего подходит диета, содержащая не менее 40% белка и 15% липидов.
Какие самые маленькие и самые большие осетровые?
Среди видов, пригодных для использования в прудах, стерлядь является самой маленькой, вырастая в среднем до 1 метра с медленной скоростью, и требуется около десяти лет, чтобы достичь взрослого размера.Сибирские осетровые вырастают примерно до 1,5 метра и достигают этого гораздо быстрее, чем стерлядь, и собирают в среднем 10 дюймов в год. Белуга, самый крупный из доступных видов осетровых, по сообщениям, может достигать размеров до 10 метров и 4500 фунтов, хотя от 5 до 7 метров и 2500 фунтов кажется более нормальным. Опять же, в зависимости от различных факторов, белухи могут вырастать примерно на метр каждые 2-10 лет. Самый крупный зарегистрированный осетр белуги имел длину 7,2 метра и весил 3 463 фунта.
Достаточно ли большой мой пруд для выращивания осетровых? Даже для самого маленького вида осетровых, стерляди, вам все равно понадобится пруд значительного размера, чтобы в нем могла разместиться взрослая особь размером в 1 метр.
Осетровые из-за значительных размеров требуют больших прудов. Для стерляди, самого мелкого вида осетровых, вам понадобится как минимум от 1000 до 2000 галлонов (на одного осетра). Все другие доступные виды осетровых должны содержаться в объеме не менее 3000 галлонов (опять же, на одного осетра), и если вы хотите завести белугу, даже не думайте об этом, если ваш пруд не имеет хотя бы 15 000 галлонов. Ваш пруд должен быть не менее 4 футов глубиной для любого осетра, хотя лучше всего от 10 до 15 футов, поскольку они предпочитают глубокие воды.
Кроме того, осетровые наиболее активны на рассвете и в сумерках и предпочитают мало или мало освещенности. Фактически, они развили несколько уникальных приспособлений, которые помогают им процветать в глубоких темных водах — вместо того, чтобы использовать зрение, осетровые осетры чувствуют вокруг, используя четыре невероятно чувствительных, длинных усика на лице. У них также есть электрорецепторные органы, называемые ампулами Лоренцини, которые чувствуют даже малейшие электрические токи в воде и позволяют им сосредоточиться на еде, а также избегать опасности.Чтобы осетрам было комфортно в ясный и теплый день, сделайте в пруду укрытия, например, затопленные бревна и навесы, а также посадите тенистые деревья вдоль кромки воды.
Распространенные болезни осетровых и проблемы с прудами
1) Осетровые вырастают очень большими В зависимости от вида осетровые могут вырасти очень большими, поэтому вам необходимо убедиться, что ваш пруд достаточно большой.
Как обсуждалось выше, осетровые вырастают довольно крупными.Одна из наиболее распространенных проблем — владельцы прудов не имеют достаточно большого пруда для выращивания осетровых, и поэтому они перерастают пруд, или просто не предвидят, насколько большим станет это семейство рыб. Осетровых очень сложно вернуть домой, и 85% видов считаются находящимися под угрозой исчезновения, поэтому исключительно важно, чтобы вы были абсолютно уверены, что хотите осетра, и были готовы дать ему то, что ему нужно. Кроме того, в зависимости от размера, осетровые едят … много. Будьте уверены, что у вас есть финансовые возможности для кормления и содержания осетровых!
2) Осетр будет есть мальков и мелкую рыбу Осетр с удовольствием перекусит мальком и молодью рыбы, поэтому вам нужно будет это учитывать, если у вас есть кои или золотая рыбка.
Другой случайной проблемой является то, что они могут есть другую рыбу, хотя это не является обычным явлением, и они обычно прекрасно ладят со всеми видами рыб, кроме самых мелких (и / или самых медленных). Более мелкие осетры, такие как стерлядь, могут есть маленьких золотых рыбок или гуппи, в то время как более крупные виды (например, белухи), как известно, едят кои. Чтобы предотвратить это, убедитесь, что вы кормите осетровых регулярно и в рекомендуемом количестве около 2% от их веса каждый день с содержанием белка не менее 40%. Если вы заметили, что осетр всплывает на поверхность или сгибается пополам, значит, он не получает достаточного питания и требует немедленного кормления.Другое решение — держать осетровых в отдельном пруду от других рыб.
В большинстве случаев, однако, содержание более мелких видов осетровых вместе со взрослыми кои и золотой рыбкой совершенно нормально, если осетр не голодает!
3) Осетровые предпочитают высокорастворимый кислород Осетровые требуют более высокого содержания растворенного кислорода по сравнению с другими прудовыми рыбами, поэтому необходимы специальные аэраторы.
Осетровым требуется больше растворенного кислорода, чем большинству других видов рыб, так как в дикой природе они обитают в более холодной воде на дне, которая содержит больше кислорода, чем более теплые поверхностные воды, где другие рыбы предпочитают болтаться, а большие тела осетровых потребляют больше кислорода. в общем быстро.Фактически, хотя большинство рыб способны выжить при уровне кислорода 6 частей на миллион (ppm), осетровые часто задыхаются и умирают; Лучше всего для них подходят уровни кислорода 8 ppm или выше.
Обычный совет по выращиванию большого количества растений для обеспечения большего количества кислорода здесь не работает, так как, как известно, осетровые запутываются в них (помните, они очень большие, с плохим зрением и медленной маневренностью). Вместо этого используйте насос или аэратор, а летом вам может понадобиться два из них, так как более теплая вода может удерживать меньше кислорода, а чувствительные осетры с большей вероятностью погибнут в прудах летом.
4) Осетровые могут заражаться паразитами Соляные ванны часто считаются самым безопасным вариантом лечения паразитов у осетровых из-за их чувствительности к другим соединениям.
Хотя известно, что они не особенно восприимчивы к болезням или недомоганиям (спасибо, сотни миллионов лет эволюции!), Они могут иметь некоторые проблемы с паразитами. Наиболее распространенными паразитами, поражающими осетровых, являются те, например, сосальщики, которые прикрепляются к более мягким, менее бронированным частям рыбы, например, вокруг плавников и рта, а затем всасывают кровь, потенциально передавая бактерии и способствуя заражению в этом процессе.Чтобы избавиться от этих паразитов или предотвратить их распространение, многие владельцы прудов прибегают к помощи паразитицидов. Однако следует избегать следующих обработок, поскольку известно, что они убивают или серьезно угрожают здоровью осетровых: все, что содержит медь или цинк (включая сульфат меди), органофосфаты, формалин и перманганат калия.
В общем, все, что известно как вредное для золотистых рыб, не следует использовать и с осетровыми. Вместо этого рекомендуется соляная ванна, чтобы избавить осетровых от паразитов.Для бактерий и грибков можно использовать натуральный малахитовый зеленый, но обязательно исследуйте дозировку, поскольку высокие концентрации могут быть потенциально опасными или смертельными.
Разведение осетровых: факты и соображения Разведение осетровых может быть трудным, но вы можете увеличить шансы, если у вас большой пруд, прохладная вода, каменистый субстрат и большая аэрация.
Разведение осетровых требует времени и терпения, так как они медленные во всех отношениях существа и могут размножаться только один или два раза в десятилетие.В зависимости от вида, половая зрелость у самок достигается примерно через 15 лет (но может длиться дольше), а у самцов — примерно от 8 до 10 лет.
Необходим каменистый субстрат для пруда из гравия или камней, так как в дикой природе это то, что они будут искать, чтобы отложить яйца. Кроме того, ваш пруд должен быть несколько метров (не менее 3) глубиной, с достаточное количество передвижения (осетровые в дикой природе, как правило, размножаются в реках) и относительно прохладная вода (это зависит от вида, но лучше всего при температуре ниже 70 ° F).
Осетровые являются нерестовыми особями, что означает, что самки откладывают яйца и позволяют быстро проточной воде нести их до тех пор, пока липкие поверхности икры не прикрепятся к камням и гравию, а затем самцы разбрызгивают сперму, которая также переносится быстрой водой к яйца. Вот почему осетровые (за исключением озерных осетровых), как правило, имеют больше шансов нереститься в водах с мутностью и течением.
ScienceCentral
Abou-Zeid SM. 2002. Влияние некоторых лекарственных растений на репродуктивную и продуктивность рыб нильской тилапии.Кандидат наук. Тезис. Каирский университет, сельскохозяйственный факультет; Каир, Египет: 212
[Google Scholar]
Абдель-Хаким Н.Ф., Лашин М.М., Аль-Азаб ААМ., Ашри А.М. 2010. Влияние свежего или сушеного чеснока в качестве натуральной кормовой добавки на показатели роста и использование питательных веществ нильской тилапии ( Oreochromis niloticas ). Египет J. Aquat. Биол. Рыбы. 14: 19–38.
[CrossRef] [PDF] [Google Scholar]
Agarwal KC. 1996. Лечебные действия составляющих чеснока. Med Res Rev. 16: 111–124.
[CrossRef] [Google Scholar]
Agusti KT. 1996. Лечебная ценность лука ( Allium cepa л) и чеснока ( Allium sativum л). Индийский J Exp Biol. 34: 634–640.
[Google Scholar]
Аль-Салахи МБ., Махмуд А.А.Б. 2003. Метаболические и гистологические исследования воздействия чеснока на плотоядных рыб Chrysichthys auratus . Египет J Bot. 5: 94–107.
[Google Scholar]
AOAC. 1995. Официальные методы анализа.16-е изд. Ассоциация официальных химиков-аналитиков; Арлингтон, Вирджиния, США:
Бампидис В.А., Христодулу В., Кристаки Э., Флору-Панери П., Спайс А.Б. 2005. Влияние диетических добавок луковиц чеснока и чесночной шелухи на продуктивность и характеристики туши растущих ягнят. Anim Feed Sci Technol. 121: 273–283.
[CrossRef] [Google Scholar]
Bhosale SV., Bhilave MP., Nadaf SB. 2010. Составление кормов для рыб с использованием ингредиентов из растительных источников. Res J Agric Sci. 1: 284–287.
[Google Scholar]
Бордиа А., Верма С.К., Шривастава К.С. 1996. Влияние чеснока на агрегацию тромбоцитов у людей: исследование на здоровых предметах и пациентах с ишемической болезнью сердца. Простогландины лейкот. Присутствуют жирные кислоты. 55: 201–205.
[CrossRef] [Google Scholar]
Chi MS., Koh ET., Steward TJ. 1982. Влияние чеснока на липидный обмен у крыс, получавших холестерин или сало. J Nutr. 112: 241–248.
[CrossRef] [PDF] [Google Scholar]
Читарасу Т., Бабу М.М., Punitha SMJ., Venket Ramalingam K., Marian MP. 2001. Борьба с патогенными бактериями с использованием биомедицинских травяных продуктов в системе культивирования личинок Penaeus monodon . В: Международная конференция по передовым технологиям в рыболовстве и морских науках; М.С. Университет; Тирунелвели, Индия. п. 104.
[Google Scholar]
Читарасу Т., Секар Р.Р., Бабу М.М., Мариан М.П. 2002. Разработка травяного рациона, обогащенного артемией, для получения качественных личинок Penaeus monodon .Asian Fish Sci. 15: 21–32.
[Google Scholar]
Citarasu T. 2010. Травяная биомедицина: новая возможность для индустрии аквакультуры. Aquacult Int. 18: 403–414.
[CrossRef] [PDF] [Google Scholar]
Diab AS., El-Nagar GO., Abd-El-Hady YM. 2002. Оценка Nigella sativa L (черные семена; барака), Allium sativum (чеснок) и BIOGEN в качестве кормовых добавок на показатели роста и иммуностимуляторы для сеголетков O. niloticus . Suez Canal Vet.Med. J. 745–775.
[Google Scholar]
Дункан ДБ. 1955. Множественные тесты дальности и множественные F-тесты. Биометрия. 11: 1–42.
[CrossRef] [Google Scholar]
Эль-Дакар AY., Hassanien GDI., Gad SS., Sakr SE. 2004a. Использование лекарственных и ароматических растений в рационе рыб: I. Влияние сушеных листьев майорана на продуктивность гибридной тилапии Oreochromis niloticus × Oreochromis auraus, сеголетков. J. Egypt. Акад. Soc. Environ. Dev. (Б. Аквакульт.). 5: 67–83.
[Google Scholar]
Эль-Дакар А.Ю., Hassanien GDI., Gad SS., Sakr SE. 2004b. Использование лекарственных и ароматических растений в рационе рыб: 2. Влияние сушеных листьев базилика на продуктивность гибридной тилапии Oreochromis niloticus × Oreochromis auraus, сеголетков. В: 3-й Интер. Конф. по животноводству и здоровью в полузасушливых регионах; Университет Суэцкого канала; Суэцкий канал, Египет: стр. 265–277.
[Google Scholar]
Фернандес-Наварро М., Перагон Х., Эстебан Ф., Игера М., Лупианес Я. 2006. Маслиновая кислота в качестве кормовой добавки для стимуляции роста и скорости метаболизма белка в печени радужной форели ( Onchorhynchus mykiss ).Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol. 144: 130–140.
[CrossRef] [Google Scholar]
Foushee DB., Ruffin J., Banerjee U. 1982. Чеснок как натуральное средство для лечения гипертонии: предварительный отчет. Cytobios. 34: 145–152.
[Google Scholar]
Freitas R., Fonseca JB., Soares RT., Rostagn HS., Soares PR. 2001. Использование чеснока ( Allium sativum L.) в качестве стимулятора роста бройлеров. Rev Bras Zootec. 30: 761–765.
[CrossRef] [PDF] [Google Scholar]
Horton GMJ., Блетен ДБ., Прасад БМ. 1991. Влияние чеснока ( Allium sativum) на вкусовые качества кормов лошадей и потребление корма, выбранную продуктивность и параметры крови у овец и свиней. Может J Anim Sci. 71: 607–610.
[CrossRef] [Google Scholar]
Hung SSO., Conte FS., Frost F. 1998. Рост белого осетра получал семь коммерческих кормов. Аквакультура. 161: 89–93.
[CrossRef] [Google Scholar]
Джаяпракас В., Эуфарсия Дж. 1996. Показатели роста Labeo rohita (Ham.) Ливол (IHF-1000) растительный продукт. Proc Indian Natl Sci Acad. 63: 1–10.
[Google Scholar]
Jegede T. 2012. Влияние чеснока ( Allium sativum ) на рост, использование питательных веществ, устойчивость и выживаемость сеголетков Tilapia zillii (Gervais 1852). J Agricult Sci. 4: 269–274.
[Google Scholar]
Халил Р.Х., Надя Б.М., Солиман М.К. 2001. Влияние биогена и левамизола Hcl на иммунный ответ культивированной вакцины Oreochromis niloticus – Aeromonas hydrophila .Beni-Suef Vet. Med. J., Египет. XI (2): 381–392.
[Google Scholar]
Хаттаб Я.А., Шалабы АМС., Шараф С.М., ЭЛ-Маракбы Х.И., Рижалла Э.Х. 2004. Физиологические изменения и показатели роста нильской тилапии Oerochromis niloticus после кормления Биогеном в качестве стимулятора роста. Египет J. Aquatic. Biol Fish. 8: 145–158.
[Google Scholar]
Краюшкина Л.С. 2006. Соображения об эволюционных механизмах осмотической и ионной регуляции у Acipenseridae: обзор.J Appl Ichthyol. 22: 70–76.
[CrossRef] [Google Scholar]
Lee DH., Ra CS., Song YH., Sung KI., Kim JD. 2012. Влияние диетических экстрактов чеснока на рост, использование корма и состав всего тела молоди стерляди ( Acipenser ruthenus ). Азиатский Австралийский J Anim Sci. 25: 577–583.
[ScienceCentral] [CrossRef] [Google Scholar]
Lim SR. 2009. Оптимальный уровень протеина в рационе и оптимальное соотношение протеина к энергии у стерляди осетровых рыб, Acipenser ruthenus .Кандидат наук. Тезис. Национальный университет Пукён, Пусан, Корея: 82–85.
[Google Scholar]
Macmahon FG., Vargus R. 1993. Может чеснок понижать кровяное давление. Пилотное исследование. Фармакотерапия. 13: 406–407.
[Google Scholar]
Metwally MAA. 2009. Влияние чеснока ( Allium sativum ) на некоторые антиоксидантные свойства тилапии нилотической ( Oreochromis niloticus ). Мир J Fish Mar Sci. 1: 56–64.
[Google Scholar]
Ния Э.Дж., Остин Б. 2009. Использование чеснока, Allium sativum, для борьбы с инфекцией Aeromonas hydrophila у радужной форели, Oncorhynchus mykiss (Walbaum).J Fish Dis. 32: 963–970.
[CrossRef] [Google Scholar]
Pait AS., Nelson JO. 2003. Вителлогенез у мужчин Fundulus heteroclitus (Killifish), индуцированный выбранными эстрогенными соединениями. Aquat Toxicol. 64: 331–342.
[CrossRef] [Google Scholar]
Роббинс К.Р., Нортон Х.В., Бейкер Д.Х. 1979. Оценка потребностей в питательных веществах по данным роста. J Nutr. 109: 1710–1714.
[CrossRef] [PDF] [Google Scholar]
Саху С., Дас Б.К., Мишра Б.К., Прадхан Дж., Саранги Н.2007. Влияние Allium sativum на иммунитет и выживаемость Labeo rohita , инфицированных Aeromonas hydrophila . J Appl Ichthyol. 23: 80–86.
[CrossRef] [Google Scholar]
Шалабы AM., Хаттаб Ю.М., Абдель Рахман AM. 2006. Влияние чеснока ( Allium sativum ) и хлорамфеникола на показатели роста, физиологические параметры и выживаемость Nile Tilapia ( Oreochromis niloticus ). J. Venom. Anim. Токсины, вкл. Trop Dis. 12: 172–201.
[Google Scholar]
Шалабы SMM. 2004. Ответ нильской тилапии, Oreochromis niloticus, сеголетков на рацион, дополненный различными количествами семян пажитника (Hulba). J Agric Mansoura Univ. 29: 2231–2242.
[Google Scholar]
Шалабы СММ., Абд Эльмонем А.И., Эль-Дакар А.Ю. 2003. Повышение показателей роста, корма и использования питательных веществ нильской тилапии ( Oreochromis niloticus ) за счет использования корней солодки (Erksou s ) в качестве привлекательного корма.J. Egypt. Акад. Soc. Environ. Развивать. (B-Аквакультура). 4: 119–142.
[Google Scholar]
Шин Ш., Ким МК. 2004. Влияние сухих порошков или этанольных экстрактов из мякоти и кожуры чеснока на липидный обмен и антитромбиогенную способность у 16-месячных крыс. J Nutr Health. 37: 515–524.
[Google Scholar]
Сиварам В., Бабу М.М., Иммануэль Г., Муругадасс С., Читарасу Т., Мариан М.П. 2004. Рост и иммунный ответ молоди жирных групперов ( Epinephelus tauvina ), получавших рацион с добавлением растительных антибактериальных активных веществ, против инфекций Vibrio harveyi .Аквакультура. 237: 9–20.
[CrossRef] [Google Scholar]
Солтан М.А., Эль-Лайти С.М. 2008. Влияние пробиотиков и некоторых специй в качестве кормовых добавок на продуктивность и поведение нильской тилапии, Oreochromis niloticus . Египет J Aquat Biol Fish. 12: 63–80.
[Google Scholar]
SPSS Inc. 1999. Руководство пользователя SPSS Base 10.0 для Windows. SPSS Inc; Чикаго, Иллинойс, США:
Tatara MR., Sliwa E., Dudek K., Gawron A., Piersiak T. 2008. Выдержанный экстракт чеснока и аллицин улучшают продуктивность и развитие желудочно-кишечного тракта поросят, выращенных в искусственных свиноматках.Энн Агрик Энвайрон Мед. 15: 63–69.
[Google Scholar]
Wanapat M., Khejornsart P., Pakdee P., Wanapat S. 2008. Влияние добавок чесночного порошка на экологию рубца и усвояемость питательных веществ у жвачных животных. J Sci Food Agric. 88: 2231–2237.
[CrossRef] [Google Scholar]
Yeh YY., Лю Л. 2001. Снижающий холестерин эффект экстрактов чеснока и сероорганических соединений: исследования на людях и животных. J Nutr. 131: 9895–9935.
[CrossRef] [PDF] [Google Scholar]
Zeitoun IH., Ullrey DE., Magae DE., Gill JL., Bergen WG. 1976. Количественная оценка потребностей рыб в питательных веществах. Журнал Совета по исследованиям рыболовства Канады. 33: 167–172.
[CrossRef] [Google Scholar]
Другое: Стерлядь — 7 Указания по содержанию в садовом пруду
Домашний
Другой
Стерлядь — 7 Инструкция по содержанию в садовом пруду

Содержание статьи:
Многие владельцы прудов очарованы осетром — древней рыбой, которая живет на Земле около четверти миллиарда лет.К тому же осетровые очень отзывчивые рыбы, которых можно даже погладить. Хотя это больше потому, что у них врожденный рефлекс полета, что касается странных потребностей в нежности, но все же это отличный опыт для детей. Однако большинство осетровых достигают размеров, требующих количества воды для поддержания положения, о котором владелец садового пруда может только мечтать. Самым маленьким осетром, которого можно держать в садовом пруду, является стерлядь.
(1) Стерлядь (Acipenser ruthenus) — это небольшой осетр, вырастающий в среднем на 50 см, но иногда и более чем на метр.Красавица от темно-серого до коричневого в верхней части, брюшко светлее, от бежевого до желтоватого с красным отливом. Декоративны спинки от 11 до 17 цвета слоновой кости, это костяные пластины с острым гребнем и крючками. Кроме того, верхняя половина нижней половины ограничена множеством ярких боковых щитков от корня хвоста до жаберного покрова, из-за чего стерлядь выглядит так, как будто она обрамлена мелком. Встречается, конечно, в реках, на всем северо-востоке Европы, с Дуная, на юг до Баварии.Стерлядь остается в пресной воде, в отличие от других нарушителей, она не мигрирует в море.

(2) Водоток естественной среды обитания также дает первые признаки такого отношения: даже если стерлядь была обнажена и выжила в некоторых гравийных озерах Центральной Европы, ей необходимо движение воды и много кислорода в воде. Стерлядь, речная рыба, нуждается в большом количестве места для плавания, многолетние пловцы на самом деле постоянно находятся в движении, даже ночью, когда им нравится исследовать водную гладь.Кроме того, стерляди нужна прохладная вода, температура воды не должна превышать 20 градусов.

(3) Для этого требуются большие пруды с достаточной глубиной, менее 20 000 литров немыслимо. Пространство глубиной от 1,5 до 2 метров должно быть как минимум настолько большим, чтобы вы обеспечивали взрослой стерляди дистанцию бегства. Это примерно в 12 раз больше длины ее тела, поэтому в глубине пруда стерлядь должна быть не менее 12 метров. Также важна достаточная вентиляция, и счастливой стерлядь в пруду, вероятно, будет только в том случае, если вы построите для него поток.

(4) В отличие от других видов осетровых рыб, стерлядь растет медленно, но вы не должны совершать ошибку, приобретая симпатичных маленьких стерлядей длиной 15 см в Садовом центре, где эту рыбу часто называют Swarmfish. Для многих рыб длиной около метра вам понадобится большое озеро перед домом! Содержать стерляди в слишком маленьких или слишком неглубоких прудах — просто жестокость по отношению к животным, а потом они их мучают.

(5) Если размер пруда и другие условия подходящие, вы все равно должны обеспечить адекватное кормление.Особенно если в водоеме обитает другая рыба, стерлядь голодает во многих водоемах, так как они не только очень медленно едят, но и не знают хищников и поэтому не защищаются от кражи пищи. Стерлядь питается личинками насекомых, моллюсками и червями, которых зазубривает во рту. Поэтому питаться они могут только с земли, плавающая пища не усваивается. Так как стерлядь в садовом пруду натурального количества корма не хватает, необходимо ее подкормить. Есть специальные корма для осетровых, которые быстро опускаются на землю.Также подходит корм для карпа или форели, но жирность не должна превышать 14%. К сожалению, стерлядь также является явным гурманом, не только владельцу пруда приходилось пробовать несколько видов корма. Если еда находится в воде более получаса, она все равно отвергнется. Выгодными оказались специальные места для кормления в плоских зонах, которые можно увидеть. Там можно кормить как можно меньше несколько раз в день, в сумме стерляди требуется около 1% от массы тела корма. Если стерлядь содержится вместе с жадными поедами, такими как кои, кормление после захода солнца может помешать кои съесть всю пищу из стерляди.

(6) Некоторые владельцы прудов также используют трубку, по которой вода опускается на дно и затем заполняется кормом, так что вам следует обмануть кои. Этот прием также подходит для зимнего кормления, потому что зимних осетровых нужно кормить примерно половиной количества корма, в то время как большинство других рыб не должны получать корм. Только когда водоем замерзает, стерлядь перестает кормить.

(7) Другая опасность, особенно для маленьких стерляди, — нитчатые водоросли, стерлядь имеет очень грубую кожу, которой они обвиваются в водорослях.Потому что стерлядь — известные речные рыбы, со встроенной тягой вперед, плавать назад они не умеют. Поэтому они не могут освободиться от водорослей и погибнуть. Если стерлядь будет помещена в пруд, его следует предварительно очистить от нитевидных водорослей, а также следует постоянно контролировать водоросли.
Видеоплата: новый фильтр для пруда Koi Pond, 26 000 литров, фильтр Clear Pond 80.

.
No related posts.

Выращивание стерляди: Разведение стерляди » FISH-AGRO | Проектирование и поставка оборудования для рыборазведения в УЗВ

Разведение стерляди » FISH-AGRO | Проектирование и поставка оборудования для рыборазведения в УЗВ

Разведение стерляди в домашних условиях: в пруду, в бассейнах

Выбор подходящего помещения

Необходимое оборудование

Приобретение мальков

Кормление стерляди

Простая технология

Экономические расчеты

Разведение в прудах

Видео: Разведение стерляди

Стерлядь

Биотехника выращивания бестера

Совместное разведение бестера и растительноядных рыб

Технология выращивания бестера

Прудовое разведение бестера совместно с растительноядными рыбами

Производственные процессы

Стерлядь

Выращивание осетровых

Рост и кормление молоди стерляди Acipenser ruthenus L. (Acipenseridae) в пруду после разного времени предварительного содержания в резервуарах

Стерлядь для пруда

Привычки кормления

Общие имена

Срок службы

Половая зрелость

Плодовитость

Период нереста

Требования к нересту

российских инкубаториев возродили рынок черной икры

По хромосомной окраске в геноме стерляди (Acipenser ruthenus) выявлена сегментарная палеотетраплоидия | Молекулярная цитогенетика

Прудовые осетровые. Факты и рекомендации (Что такое осетровые?)

ScienceCentral

Другое: Стерлядь — 7 Указания по содержанию в садовом пруду

Видеоплата: новый фильтр для пруда Koi Pond, 26 000 литров, фильтр Clear Pond 80.

Об авторе

alexxlab

Добавить комментарий Отменить ответ

Разведение стерляди » FISH-AGRO | Проектирование и поставка оборудования для рыборазведения в УЗВ

Разведение стерляди в домашних условиях: в пруду, в бассейнах

Выбор подходящего помещения

Необходимое оборудование

Приобретение мальков

Кормление стерляди

Простая технология

Экономические расчеты

Разведение в прудах

Видео: Разведение стерляди

Стерлядь

Биотехника выращивания бестера

Совместное разведение бестера и растительноядных рыб

Технология выращивания бестера

Прудовое разведение бестера совместно с растительноядными рыбами

Производственные процессы

Стерлядь

Выращивание осетровых

Рост и кормление молоди стерляди Acipenser ruthenus L. (Acipenseridae) в пруду после разного времени предварительного содержания в резервуарах

Стерлядь для пруда

Привычки кормления

Общие имена

Срок службы

Половая зрелость

Плодовитость

Период нереста

Требования к нересту

российских инкубаториев возродили рынок черной икры

По хромосомной окраске в геноме стерляди (Acipenser ruthenus) выявлена ​​сегментарная палеотетраплоидия | Молекулярная цитогенетика

Прудовые осетровые. Факты и рекомендации (Что такое осетровые?)

ScienceCentral

Другое: Стерлядь — 7 Указания по содержанию в садовом пруду

Видеоплата: новый фильтр для пруда Koi Pond, 26 000 литров, фильтр Clear Pond 80.

Об авторе

alexxlab

Читайте также

Как заработать на своей группе в вк: Заработок в ВК: как заработать деньги ВКонтакте на группе, лайках +12 способов

Биржевые торги: Что такое Биржевые торги? Биржевые торги — это… Расписание тренингов. Все Тренинги .ру

Защита прав потребителя это: » » () 07.02.1992 N 2300-1 ( ) /

Добавить комментарий Отменить ответ

По хромосомной окраске в геноме стерляди (Acipenser ruthenus) выявлена сегментарная палеотетраплоидия | Молекулярная цитогенетика